Reinigung, Desinfektion und Sterilisation von Räumen und Umgebungen im Gesundheitswesen

Reinigung, Desinfektion und Sterilisation sind die Eckpfeiler der Infektionsprävention und -kontrolle in Einrichtungen und Umgebungen des Gesundheitswesens

Trotz dieser Beweise gibt es viele Situationen, in denen diese Verfahren fehlen oder sogar fehlen und in denen das Personal schlecht oder unzureichend geschult ist.

Reinigung, Desinfektion und Sterilisation, einige grundlegende Konzepte:

REINIGUNG UND VORREINIGUNG

Während „Reinigung“ das Entfernen von sichtbarem Schmutz bedeutet, bezieht sich der Begriff „Vorreinigung“ auf das Entfernen von Körperflüssigkeiten und anderen Verunreinigungen vor der Desinfektion oder Sterilisation.

Eine angemessene Vorreinigung kann die mikrobielle Belastung durch Krankheitserreger erheblich reduzieren, während die Entfernung organischer und anorganischer Rückstände den Aufbereitungsprozess erleichtern kann.

MÖCHTEN SIE MEHR ÜBER DIE SEKTOR KRANKENWAGEN-EINBAU WISSEN? BESUCHEN SIE DEN STAND VON MARIANI FRATELLI AUF DER EMERGENCY EXPO

Eine sorgfältige Reinigung ist für eine wirksame Desinfektion oder Sterilisation unerlässlich

Eine effektive Reinigung und Vorreinigung von Geräten erfordert oft Chemikalien, kombiniert mit mechanischer Einwirkung und Hitze.

Sie kann manuell und/oder mit automatisierten Maschinen durchgeführt werden.

Die manuelle Vorreinigung erfordert den Einsatz von Reinigungsmitteln oder Enzymen in Kombination mit einer mechanischen Tätigkeit des Bedieners (Reiben, Bürsten, Spülen), um Schmutz von der Außenseite und Innenseite der aufzubereitenden Produkte zu entfernen.

Nach der Reinigung oder Desinfektion müssen die Geräte gründlich gespült werden, um chemische Rückstände zu entfernen, und anschließend wie vom Hersteller empfohlen getrocknet werden.

Alle aufbereiteten Produkte müssen ordnungsgemäß gelagert werden, um Schäden oder Rekontaminationen zu vermeiden.

REINIGUNG, DESINFEKTION UND STERILISATION: DIE SPAULDING-KLASSIFIZIERUNG

1968 klassifizierte Spaulding medizinische/chirurgische Geräte als kritisch, halbkritisch und nicht kritisch, basierend auf ihrem Potenzial, Infektionen zu verbreiten.

Kritische Geräte gelangen normalerweise in steriles Gewebe, in das Gefäßsystem oder in Systeme, durch die Blut fließt; Beispiele sind chirurgische Instrumente und Gefäßkatheter.

Diese Geräte müssen vor Gebrauch ordnungsgemäß und sicher vorgereinigt und sterilisiert werden.

Semikritische Produkte kommen mit intakten Schleimhäuten oder nicht intakter Haut in Kontakt; Beispiele sind faseroptische Endoskope, Vaginalsonden und assistierte Beatmung Ausrüstung.

Diese Artikel erfordern vor der Verwendung eine ordnungsgemäße Vorreinigung und mindestens eine hochgradige Desinfektion.

Unkritische Geräte (wie Blutdruckmanschetten, Stethoskope), die mit intakter Haut in Kontakt kommen, haben ein geringes Risiko, Infektionen zu verbreiten, mit Ausnahme der Übertragung von Krankheitserregern auf die Hände des medizinischen Personals.

Das regelmäßige Reinigen und Abwischen dieser Geräte mit einem neutralen Reinigungsmittel oder einer 70%igen Lösung aus Wasser und Ethanol ist normalerweise ausreichend (wiederverwendbare Steckbecken gelten zwar als unkritische Geräte, erfordern jedoch eine gründlichere Reinigung, Reinigung und Desinfektion, insbesondere wenn sie mit z Verdacht auf Vancomycin-resistente Enterokokken oder Clostridium difficile).

Die meisten Umgebungsoberflächen in Patientenzimmern und Wartezimmern sind als unkritisch anzusehen und erfordern keine routinemäßige Desinfektion.

Besonders kontaktreiche Oberflächen, insbesondere in unmittelbarer Nähe des Patienten, bedürfen jedoch einer regelmäßigen Dekontamination, um eine Übertragung von Krankheitserregern auf die Hände des Pflegepersonals zu vermeiden.

Ob, wann, wie und wie oft solche Flächen dekontaminiert werden sollten, ist in neueren Leitlinien nicht konkret angegeben. 9,10.

Das Klassifikationssystem von Spaulding 7 behält zwar seine Gültigkeit, muss aber an die aktuellen Bedürfnisse angepasst werden.

Prionen mit ihrer ungewöhnlichen Resistenz gegenüber physikalischen und chemischen Einwirkungen 11 und das Auftreten von pflegebedingten Infektionen durch Clostridium difficile-Sporen 10 oder Carbapenemika-resistente Enterobacteriaceae 12 treiben eine Überprüfung der Aufbereitung von Medizinprodukten voran.

Mit Prionen kontaminierte Geräte erfordern Sterilisationsprotokolle, die weit über die normalerweise verwendeten hinausgehen 11.

Einige Desinfektionsmittel (z. B. Aldehyde), die üblicherweise zur Aufbereitung von Magen-Darm-Endoskopen verwendet werden, benötigen längere Kontaktzeiten, um C. difficile-Sporen abzutöten.

Wärmeempfindliche Geräte wie flexible faseroptische Endoskope werden zunehmend für Operationen eingesetzt, bei denen die Integrität der Schleimhaut bewusst verletzt wird, wodurch die Grenze zwischen „kritischen“ und „semikritischen“ Geräten überschritten wird.

DIE WIEDERAUFBEREITUNG VON MEDIZINPRODUKTEN: DESINFEKTION

„Desinfektion“ bedeutet die Verringerung der Anzahl von Krankheitserregern auf einer unbelebten Oberfläche oder einem unbelebten Gegenstand durch den Einsatz von Hitze, Chemikalien oder beidem.

Die meisten Desinfektionsverfahren haben wenig Aktivität gegen Bakteriensporen; eine Verringerung der Sporenmenge wird hauptsächlich durch mechanische Einwirkung und Waschen erreicht.

DIE NUMMER EINS IN DER KRANKENWAGENAUSSTATTUNG IN ITALIEN: BESUCHEN SIE DEN ORION-STAND AUF DER EMERGENCY EXPO

REINIGUNG, DESINFEKTION UND STERILISATION: PASTEURISIERUNG UND KOCHUNG

Halbkritische Geräte, wie sie für Atemtherapie- oder Anästhesiegeräte verwendet werden, können durch Erhitzen in Wasser pasteurisiert werden.

Alle ihre Teile müssen mindestens 30 Minuten bei 65-77 °C vollständig eingetaucht bleiben.

An Orten in höheren Lagen wird mehr Zeit benötigt, um den Siedepunkt des Wassers zu erreichen, da dieser mit zunehmender Entfernung vom Meeresspiegel zunimmt. 13

Das Einweichen von hitzebeständigen Geräten in kochendes Wasser für etwa 10 Minuten kann die mikrobielle Belastung durch Krankheitserreger erheblich reduzieren, sollte jedoch niemals als „Sterilisation“ angesehen werden.

Pasteurisieren und Kochen sind daher Low-Tech-Methoden ohne Chemikalien (solange das Wasser rein ist); Nach der Behandlung müssen die Gegenstände für einen sicheren Transport und eine sichere Lagerung sorgfältig behandelt werden.

REINIGUNG, DESINFEKTION UND STERILISATION: CHEMISCHE DESINFEKTION

Übliche chemische Desinfektionsmittel umfassen Alkohole, Chlor und Chlorverbindungen, Glutaraldehyd, Orthophthalaldehyd, Wasserstoffperoxid, Peressigsäure, Phenole und quartäre Ammoniumverbindungen (CAQ).

Diese Chemikalien können allein oder in Kombination verwendet werden.

Sie müssen gemäß den Anweisungen des Herstellers auf dem Produktetikett und nur auf Oberflächen verwendet werden, mit denen sie kompatibel sind.

Idealerweise sollten kommerzielle Produkte Standardtests bestehen, um die Angaben auf dem Etikett zu bestätigen, bevor sie verkauft und in Gesundheitseinrichtungen verwendet werden.

Die Anforderungen für die Registrierung von Produkten und die Angaben auf dem Etikett sind jedoch von Region zu Region sehr unterschiedlich.

Chemische Desinfektionsmittel unterscheiden sich stark in Bezug auf die schädlichen Wirkungen, die sie auf Mensch und Umwelt haben können; Sie sollten mit Vorsicht und nur dann verwendet werden, wenn keine praktikablen Alternativen verfügbar sind.

Desinfektionsmittel werden nach ihrer mikrobiziden Wirkung in drei Kategorien eingeteilt: Hochwirksame Desinfektionsmittel

Hochwirksame Desinfektionsmittel (DAL) wirken gegen Bakterien in vegetativer Form, Viren (einschließlich nicht verdeckter Viren), Pilze und Mykobakterien. Bei längeren Kontaktzeiten können sie auch gegen Bakteriensporen wirksam sein.

DALs werden verwendet, um wärmeempfindliche Geräte und semikritische Geräte wie flexible faseroptische Endoskope zu desinfizieren.

Aldehyde (Glutaraldehyd und Orthophthalaldehyd) und Oxidationsmittel (z. B. Wasserstoffperoxid und Peressigsäure) sind DALs.

Aldehyde sind nicht korrosiv und können auf den meisten Geräten sicher verwendet werden.

Sie können jedoch die Haftung von organischen Materialien fördern; Daher ist es besonders wichtig, vor der Desinfektion alle anhaftenden Mikroorganismen zu entfernen.

Bei unsachgemäßer Formulierung und Verwendung können Oxidationsmittel ätzend sein.

Sie können jedoch schneller wirken, nicht fixierend und sicherer für die Umwelt sein als Aldehyde.

Je nach Temperatur benötigen DALs normalerweise 10 bis 45 Minuten Kontaktzeit.

Nach der Desinfektion müssen die Geräte gründlich mit sterilem oder mikrofiltriertem Wasser gewaschen werden, um alle Chemikalienreste zu entfernen; Geräte müssen dann vor der Lagerung getrocknet werden, indem eine alkoholbasierte Lösung geleitet oder saubere, gefilterte Luft durch die Gerätekanäle geblasen wird.

Mittelstarke Desinfektionsmittel

Ein Desinfektionsmittel (z. B. Ethanol), das gegen Bakterien in vegetativer Form, Mykobakterien, Myceten und die meisten Viren wirkt.

Selbst nach längerer Exposition kann es Sporen möglicherweise nicht abtöten.

Niedrige Desinfektionsmittel

Schwache Desinfektionsmittel (z. B. quartäre Ammoniumverbindungen) wirken gegen Bakterien in vegetativer Form (außer Mykobakterien), einige Myceten und nur behüllte Viren.

In vielen Fällen würde anstelle solcher Desinfektionsmittel ein Waschen mit nicht antiseptischer Seife und Wasser ausreichen.

STERILISATION

Sterilisation ist jeder Prozess, der alle Mikroorganismen, die sich in oder auf einem Objekt befinden, inaktivieren kann; Standard-Sterilisationsverfahren können Variationen in der Aktivität auf Prionen erfordern.11

Hitze ist das zuverlässigste Sterilisationsmittel; Die meisten chirurgischen Instrumente sind hitzebeständig.

Feuchte Hitze, die in einem Autoklaven als Dampf unter Druck verwendet wird, tötet Mikroorganismen ab, indem sie ihre Proteine ​​denaturiert.

Trockene Hitze, die in einem Ofen verwendet wird, tötet durch Oxidation durch einen viel langsameren Prozess.

Trockene Hitze wird verwendet, um feuchtigkeitsempfindliche Materialien (wasserfreie Pulver) oder Gegenstände zu sterilisieren, die Dampf nicht durchdringen kann (Öle und Wachse).

Hitzeempfindliche Geräte müssen bei niedriger Temperatur sterilisiert werden; Ethylenoxid (EO), Wasserstoffperoxidgasplasma und Formaldehyddampf werden häufig für diesen Zweck verwendet.14

Sterilisierte Produkte müssen an einem sauberen, staubfreien und trockenen Ort gelagert werden und die Unversehrtheit der Verpackung muss gewährleistet sein.

Verpackungen mit Sterilgut müssen vor Gebrauch auf Barrierefreiheit und Feuchtigkeitsfreiheit überprüft werden.

Bei Beschädigung der Verpackung dürfen die Geräte nicht verwendet, sondern erneut gereinigt, verpackt und sterilisiert werden.

Dampfsterilisation Dampf ist das zuverlässigste Sterilisationsmittel.

Es ist ungiftig (wenn es aus Wasser erzeugt wird, das frei von flüchtigen Chemikalien ist), hat ein breites Spektrum an mikrobizider Aktivität und eine gute Penetrationskapazität und ist kostengünstig und leicht zu kontrollieren.15,16

Die Sterilisation erfordert den direkten Kontakt zwischen dem zu sterilisierenden Objekt und dem Dampf bei einer erforderlichen Temperatur und einem erforderlichen Druck für eine bestimmte Zeit.

Autoklaven sind speziell konstruierte Kammern, in denen Dampf unter Druck hohe Temperaturen erzeugt.

Sie basieren auf dem gleichen Prinzip wie der Schnellkochtopf.

Es gibt zwei Haupttypen von Dampfsterilisatoren:

– Bei Autoklaven mit Entnahme durch Schwerkraft (nach unten) wird Dampf in die Oberseite der Kammer eingeführt, um das kältere, dichtere Luft-Dampf-Gemisch vom Boden der Kammer zu entfernen. Das Auslassventil schließt, wenn die gesamte Luft entfernt wurde, wodurch Druck und Temperatur ansteigen können. Solche Autoklaven werden zum Sterilisieren von Flüssigkeiten und Gegenständen in dampfdurchlässigen Räumen verwendet. Die Sterilisationsphase dauert normalerweise etwa 15 Minuten bei 121°C bei 103.4 Kilopascal (15 lbs/square inch).

– In Hochvakuumautoklaven wird zuerst ein Vakuum in der Sterilisationskammer erzeugt und dann Dampf eingeführt, was einen schnelleren und effizienteren Dampfeintritt durch die gesamte Ladung ermöglicht. Der schnell ansteigende Druck und die Temperatur ermöglichen Prozesszeiten von drei Minuten bei 134°C bei ungefähr 206.8 Kilopascal (30 Pfund/Quadratzoll).

Zu autoklavierende Instrumente müssen in Materialien verpackt werden, die das Eindringen von Dampf zulassen und das behandelte Instrument während der Lagerung steril halten.

Eine Überladung des Autoklaven muss vermieden werden, um während der gesamten Beladung freien Zugang zum Dampf zu ermöglichen.

Verpackungen müssen gekennzeichnet sein, um ihren Inhalt und das Datum der Sterilisation sowie die Seriennummer und die Zyklusnummer des Bedieners anzugeben, um einen Rückruf zu erleichtern und die Rotation der Lieferungen zu erleichtern.

Alle Dampfsterilisatoren müssen zum Zeitpunkt der Installation und danach regelmäßig analysiert werden; Es müssen Aufzeichnungen über alle Vorgänge und routinemäßigen Wartungsarbeiten geführt werden. Alle Mitarbeiter müssen gründlich in der sicheren Verwendung des Autoklaven6 geschult werden.

KONTROLLEN BEI REINIGUNG, DESINFEKTION UND STERILISATION

Biologische und chemische Indikatoren sind verfügbar und müssen für die routinemäßige Überwachung von Autoklaven verwendet werden.

Biologische Indikatoren (IB) enthalten Sporen des Bakteriums Geobacillus stearothermophilus.

Handelsübliche Sporen oder Sporen enthaltende Flaschen werden strategisch in die zu sterilisierende Ladung gelegt.

Nach einem Zyklus werden die IBs kultiviert oder auf Wachstum untersucht und dürfen kein Wachstum zeigen, um eine erfolgreiche Sterilisation zu beanspruchen.

Chemische Indikatoren (CIs) werden verwendet, um zu beurteilen, ob die erforderliche Zeit und Temperatur während des Sterilisationsprozesses erreicht wurden.

Ein Beispiel für ein CI ist das Autoklavenband, das an der Außenseite der Verpackung angebracht werden kann; das Klebeband zeigt eine Farbveränderung, wenn das Paket Hitze ausgesetzt wurde.

Obwohl ICs nicht geeignet sind, anzuzeigen, ob ein Produkt sterilisiert wurde, können sie helfen, Gerätestörungen zu erkennen und Verfahrensfehler zu identifizieren.

Beim Hochvakuumverfahren hängt das Eindringen von Dampf in die Ladung von einer angemessenen Luftentfernung ab.

Dies kann auf zwei Arten überprüft werden:

1) Bei „Dichtheitsprüfung“: Kann das Vakuum gehalten werden oder entweicht Luft? (oft um den Deckel herum).

2) Mit der Fähigkeit von Dampf, ein kleines Päckchen Handtücher zu durchdringen, die im „Bowie-Dick“-Test verwendet wurden.

Wenn die Ergebnisse dieser Prüfungen zufriedenstellend sind, ist eine alternative Prüfung die „parametrische Freigabe“.

Dieses System basiert auf der Überprüfung, dass der Sterilisationszyklus alle Spezifikationen für Temperatur, Druck und Zeit erfüllt hat, wobei kalibrierte Instrumente zusätzlich zu oder anstelle von IBs verwendet werden.

Da dieser Ansatz auf messbaren Daten und kalibrierten Instrumenten basiert, sind die Ergebnisse tendenziell zuverlässiger und viel schneller als die Verwendung von IBs.

ANDERE STERILISATOREN

Dampf wird auch in zwei anderen Arten von Sterilisatoren verwendet.

Beim Niedertemperatur-Dampf-Formaldehyd-Verfahren wird Wasserdampf (50-80°C) mit Formaldehyd in gasförmigem Zustand zur Sterilisation hitzeempfindlicher Medizinprodukte (auch solche mit eingeschränktem Lumen) verwendet.

Wie gewohnt werden die Geräte gereinigt und anschließend aufbereitet. Zuerst wird ein Vakuum erzeugt; Dampf wird in aufeinanderfolgenden Strahlen eingeführt, gefolgt von der Verdampfung des Formaldehyds.

Am Ende des Zyklus wird das Formaldehyd entfernt und der Autoklav mit mehreren Dampfstößen und Hochvakuum vollständig entleert.

Chemische und biologische Indikatoren werden verwendet, um die Leistung des Sterilisators zu überwachen.

Dieses System kann nicht mit Flüssigkeiten verwendet werden und die potenzielle Toxizität von Formaldehyd bleibt ein Problem.

Bei der Schnell- oder Sofortsterilisation (Flash-Sterilisation) wird Dampf zur Behandlung kritischer Geräte eingesetzt, wie z. B. chirurgischer Instrumente, die versehentlich während einer Operation kontaminiert wurden oder wenn keine anderen Sterilisationsmöglichkeiten zur Verfügung stehen.

Es sollte niemals für implantierbare Geräte oder zum Ausgleich von Engpässen bei wichtigen Geräten verwendet werden.

Bei der Schnellsterilisation poröser oder nicht poröser Gegenstände ist es nicht möglich, einen Autoklaven mit Schwerkraftdampfabzug oder Hochvakuum ohne Umhüllung oder Verwendung einer einzigen Umhüllung zu verwenden.

Aufgrund der Schnelligkeit, mit der Produkte aufbereitet werden, ist es nicht möglich, auf eine Ablesung der verwendeten IBs zu warten.

Wenn nicht die richtigen Behälter verwendet werden, besteht ein hohes Risiko einer Rekontamination der behandelten Gegenstände und auch von Personenverbrennungen während des Transports zum Einsatzort.

MIKROWELLE

Werden Gegenstände, die Wasser enthalten, Mikrowellen ausgesetzt, entsteht aufgrund der Reibung, die durch die schnelle Rotation von Wassermolekülen entsteht, Wärme.

Bisher wurden mit diesem Verfahren nur weiche Kontaktlinsen desinfiziert und Blasenkatheter verödet.

Kleine Wassermengen könnten jedoch für Lebensmittelzwecke sicher gemacht werden, indem sie Mikrowellen in einem Glas- oder Kunststoffbehälter ausgesetzt werden.

Ebenso können kleine Glas- oder Kunststoffgegenstände in Wasser getaucht und in einem Mikrowellenherd „desinfiziert“ werden.

STERILISATION MIT TROCKENER HITZE

Heißluftöfen werden für die Heißluftsterilisation verwendet.

Sie können hohe Temperaturen erreichen und sollten zur gleichmäßigen Wärmeverteilung mit einem Lüfter ausgestattet sein.

Das Vorwärmen erfolgt im Wesentlichen vor Beginn des Sterilisationszyklus.

Heißluftöfen sind einfacher im Design und sicherer in der Anwendung als Autoklaven und eignen sich zum Sterilisieren von Glaswaren, Metallgegenständen, Pulvern und wasserfreien Materialien (Öl und Fett).

Die Sterilisation dauert zwei Stunden bei 160 °C oder eine Stunde bei 180 °C.

Gummi, Papier und Stoff sollten nicht behandelt werden, um Brandgefahr zu vermeiden.

ETHYLENOXID

Ethylenoxid (EO) wird verwendet, um Gegenstände zu sterilisieren, die hitze-, druck- oder feuchtigkeitsempfindlich sind.

EO ist ein farbloses, brennbares, explosives Gas, das für Menschen giftig ist.

OE ist als gasförmiges Gemisch mit teilhalogenierten Fluorchlorkohlenwasserstoffen (IFCC) oder als Gemisch aus 8.5 % OE und 91.5 % Kohlendioxid erhältlich; Letzteres ist weniger teuer.

EO-Konzentration, Temperatur, relative Luftfeuchtigkeit und Exposition müssen während des Prozesses auf dem richtigen Niveau gehalten werden, um eine Sterilisation zu gewährleisten.

Die Gaskonzentration sollte zwischen 450 und 1200 mg/L liegen, die Temperatur zwischen 37° und 63°C, die relative Luftfeuchtigkeit zwischen 40 % und 80 % und die Exposition zwischen 1 und 6 Stunden.

Die Freigabe von Parameterwerten ist nicht möglich, da Gaskonzentration und relative Feuchte nicht ohne weiteres messbar sind; das IB muss in jeder Ladung enthalten sein.

Der empfohlene IB ist Bacillus atrophaeus; Ladungen sollten in Quarantäne gehalten werden, bis die Inkubation des IB abgeschlossen ist.

Die Hauptnachteile der Sterilisation mit OE sind die langen Zykluszeiten und die hohen Kosten.

Die sterilisierten Objekte müssen nach dem Prozess gut belüftet werden, um alle OE-Reste zur Patientensicherheit zu entfernen.

Wasserstoffperoxid-Plasmagas

Plasmagas wird in einer geschlossenen Kammer unter Hochvakuum unter Verwendung von Radiofrequenzen oder Mikrowellenenergie erzeugt, um Wasserstoffperoxid-Gasmoleküle anzuregen und geladene Teilchen zu erzeugen, von denen viele hochreaktive freie Radikale sind.

Plasmagas kann zum Sterilisieren von hitze- und feuchtigkeitsempfindlichen Gegenständen wie bestimmten Kunststoffen, elektrischen/elektronischen Geräten und korrosionsempfindlichen Metalllegierungen verwendet werden.

Als IB werden Sporen von G. stearothermophilus verwendet.

Dies ist ein sicheres Verfahren, und da keine Belüftung erforderlich ist, stehen sterilisierte Gegenstände für den sofortigen Gebrauch oder zur Lagerung bereit.

Es ist jedoch nicht geeignet für Geräte mit Blindkanälen, Pulvern oder Flüssigkeiten.

Weitere Nachteile sind die hohen Kosten und der Bedarf an speziellem Verpackungsmaterial, da Papier oder Leinen nicht verwendet werden können.

Außerdem stören eventuell vorhandene flüssige oder organische Rückstände den Prozess.

Begasung

In letzter Zeit ist das Interesse an der Verwendung von Begasungsmitteln in der Umwelt gestiegen, um gesundheitlich bedenkliche Krankheitserreger wie Methicillin-resistente S. aureus und C. difficile zu bekämpfen.

Eine Vielzahl von Geräten ist verfügbar, die sich in den Kosten, dem verwendeten Verfahren und der Art der Feldtests, denen sie unterzogen werden, unterscheiden.

Ein übliches Verfahren besteht darin, eine Wasserstoffperoxidlösung in einem abgeschlossenen Raum, beispielsweise einem Patientenzimmer, zu verdampfen, um Oberflächen zu dekontaminieren.

Es ist keine Belüftung nach der Behandlung erforderlich, da Wasserstoffperoxid leicht zu Sauerstoff und Wasser abgebaut wird.

Sporenstreifen (IB) werden strategisch im Raum platziert und später entnommen, um die Effektivität des Prozesses zu überwachen.

Zu den Nachteilen gehören die Inkompatibilität mit Zellulosematerialien und die mögliche Korrosion elektronischer Geräte.

Das vor Ort erzeugte Chlordioxid kann als Gas zur Raumdekontamination freigesetzt werden.

Räume müssen nicht nur abgedichtet, sondern auch abgedunkelt werden, um zu verhindern, dass Sonnenlicht den Abbau des Gases beschleunigt.

Wie Wasserstoffperoxid wird Chlordioxid auf natürliche Weise zu harmlosen Nebenprodukten abgebaut.

Ozon kann Oberflächen in geschlossenen Räumen dekontaminieren; Es ist sehr instabil und potenziell schädlich für eine Vielzahl von Materialien, die normalerweise in Gesundheitseinrichtungen zu finden sind.

Ein ozonbasierter Sterilisator für medizinische Geräte ist jedoch im Handel erhältlich.

Das Gas wird aus Sauerstoff erzeugt und am Ende des Zyklus durch Katalyse in Sauerstoff und Wasser umgewandelt.

Für dieses Gerät wird eine breite Materialkompatibilität und die Fähigkeit zur Handhabung von Dünnkanalgeräten beansprucht.

UV-STRAHLUNG

Jüngste Fortschritte in der Ultraviolett(UV)-Lichttechnologie machen das mikrobizide Potenzial von UV-Strahlung mit kurzer Reichweite für eine Vielzahl von Anwendungen nutzbar.

UV-Lampen werden häufig zur Desinfektion von Wasser und Abwasser eingesetzt.

UV-basierte Geräte werden zur Luftdesinfektion in Krankenhäusern und Kliniken vermarktet, um die Ausbreitung von Krankheitserregern in der Luft zu reduzieren.

Diese Geräte werden auch für die Desinfektion von Oberflächen in der Krankenhausumgebung vermarktet.

UV-Strahlung fügt dem behandelten Wasser und der Luft keine Chemikalien hinzu, mit Ausnahme der Erzeugung geringer Ozonwerte.

Es kann jedoch keinen Schmutz durchdringen und Gegenstände müssen direkt bestrahlt werden.

Solche Lampen erfordern eine normale Reinigung und einen regelmäßigen Austausch; sie können auch nach Abklingen der UV-Strahlung sichtbares Licht abgeben.

References:

1. Verein zur Förderung medizinischer Instrumente. Chemische Sterilisation und hochgradige Desinfektion in Gesundheitseinrichtungen. ANSI/AAMI ST58:2013.

2. Verein zur Förderung medizinischer Instrumente. Umfassender Leitfaden zur Dampfsterilisation und Sterilitätssicherung in Gesundheitseinrichtungen. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.

3. Richtlinien für den Umweltinfektionsschutz in Einrichtungen des Gesundheitswesens; Empfehlungen der CDC und des Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMW 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf

4. Regulierungsbehörde für Arzneimittel und Gesundheitsprodukte, britisches Gesundheitsministerium: Dekontamination und Infektionskontrolle; Leitlinien zur Dekontamination und Infektionskontrolle, einschließlich chirurgischer Instrumente, zahnärztlicher Ausrüstung, Endoskope und Tisch-Dampfsterilisatoren, Dezember 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438

5. Ministerium für Gesundheit und Langzeitpflege von Ontario. Beratungsausschuss für Infektionskrankheiten der Provinz (PIDAC). Best Practices for Cleaning, Disinfection and Sterilization in All Health Care Settings, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.

6. Rutala WA, Weber DJ. Richtlinie zur Desinfektion und Sterilisation in Gesundheitseinrichtungen, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Disinfection_Nov_2008.pdf

7. Spaulding EH. Chemische Desinfektion von medizinischem und chirurgischem Material. Desinfektion, Sterilisation und Konservierung, 3. Auflage, Block S (Hrsg.), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.

8. Internationale Norm ISO 15883-3; 2010, Reinigungs-Desinfektionsgeräte. Legt besondere Anforderungen für Reinigungs-Desinfektionsgeräte (WD) fest, die zum Entleeren, Spülen, Reinigen und thermischen Desinfizieren von Behältern verwendet werden sollen, in denen menschliche Ausscheidungen zur Entsorgung in einem Betriebszyklus aufbewahrt werden. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078

9. Sattar SA, Maillard JY. Die entscheidende Rolle des Wischens bei der Dekontamination von Oberflächen mit hoher Berührungsbelastung: Überprüfung des aktuellen Status und Richtungen für die Zukunft. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.

10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB, et al. Rolle von Krankenhausoberflächen bei der Übertragung neu auftretender Krankheitserreger im Zusammenhang mit dem Gesundheitswesen: Norovirus, Clostridium difficile und Acinetobacter-Spezies. Am J Infect Control 2010; 38 (5 Anhang 1): S25-33.

11. Rutala WA, Weber DJ. Richtlinie zur Desinfektion und Sterilisation von prionenkontaminierten medizinischen Instrumenten. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.

12. Muscarella LF. Risiko der Übertragung von Carbapenem-resistenten Enterobacteriaceae und verwandten „Superbugs“ während der Magen-Darm-Endoskopie. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/wjge.v6.i10.457.

13. Snyder, OP. Thermometer in kochendem Wasser kalibrieren: Siedepunkt / Atmosphärendruck / Höhentabellen. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Letzter Zugriff am 17. August 2015]

14. Kanemitsu K., Imasaka T., Ishikawa S., et al. Eine vergleichende Studie von Ethylenoxidgas, Wasserstoffperoxidgasplasma und Niedertemperatur-Dampfformaldehyd-Sterilisation. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.

15. Seavey R. High-Level-Desinfektion, Sterilisation und Antisepsis: aktuelle Probleme bei der Wiederaufbereitung von medizinischen und chirurgischen Instrumenten. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.

16. Rutala WA, Weber DJ. Neue Entwicklungen in der Aufbereitung von semikritischen Artikeln. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.

17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA, et al. Prävention und Bekämpfung multiresistenter gramnegativer Bakterien: Empfehlungen einer Gemeinsamen Arbeitsgruppe. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.

18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ, et al. ESCMID-Richtlinien für das Management von Infektionskontrollmaßnahmen zur Reduzierung der Übertragung von multiresistenten gramnegativen Bakterien bei Krankenhauspatienten. Clin Microbiol Infect 2014; Bd. 20 (Suppl s1), S. 1–55.

Außerdem:

1. Fraise AP, Maillard YJ und Sattar SA. Prinzipien und Praxis der Desinfektion, Konservierung und Sterilisation. 2013, 5. Aufl., Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, England; ISBN-13: 978-1444333251.

2. McDonnell G. Antisepsis, Desinfektion und Sterilisation: Typen, Wirkung und Widerstand; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. Elektronisch verfügbar über Google Books http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+desinfektion+and+sterilization&hl=en&ei=Z2wvTeCBAYGC8gbls8y7CQ&sa=X&oi =book_result&ct=result&res num=1&ved=0CDEQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false

3. McDonnell G. & Sheard D. Ein praktischer Leitfaden zur Dekontamination im Gesundheitswesen. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.

4. Quinn, MM et al. Reinigung und Desinfektion von Umgebungsoberflächen im Gesundheitswesen: Auf dem Weg zu einem integrierten Rahmen für die Prävention von Infektionen und Berufskrankheiten? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.

5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Charakterisierung der Sporeninaktivierung von Bacillus subtilis in Niederdruck- und Niedertemperatur-Gasplasma-Sterilisationsprozessen. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.

6. Sattar SA. Versprechungen und Fallstricke der jüngsten Fortschritte bei chemischen Mitteln zur Verhinderung der Ausbreitung nosokomialer Infektionen durch Oberflächen in der Umwelt. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.

7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Bakterielle Kontamination von Stethoskopen, die von Gesundheitspersonal verwendet werden: Auswirkungen auf die öffentliche Gesundheit. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.

8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, et al. Maßnahmen zur Infektionskontrolle zur Begrenzung der Ausbreitung von Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Ergänzung 5):2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs bei Duodenoskopen: die Herausforderung der Reinigung und Desinfektion wiederverwendbarer Geräte. J Clin Microbiol 2015: 53:3118-3125.

Lesen Sie auch:

Notfall Live noch mehr…Live: Laden Sie die neue kostenlose App Ihrer Zeitung für IOS und Android herunter

FG MICRO H2O2: Die Focaccia-Gruppe bringt das neue System zur Desinfektion von Krankenwagen auf den Markt

Reinigung, Desinfektion und Sterilisation von medizinischen Abteilungen und Umgebungen

Krankenwagendesinfektion mit einem kompakten atmosphärischen Plasmagerät: Eine Studie aus Deutschland

Wie kann ich den Krankenwagen richtig dekontaminieren und reinigen?

Vibrationen von Krankentragen: Eine Studie über die Dämpfungssysteme

Reinigung nach dem Tod, Bioremediation und Sterilisation in Krankenwagen

Quelle:

IFIC

Mehr interessante Produkte: