Nettoyage, désinfection et stérilisation des compartiments et environnements de soins

Le nettoyage, la désinfection et la stérilisation sont les pierres angulaires de la prévention et du contrôle des infections dans les locaux et environnements de soins

Malgré ces évidences, il existe de nombreuses situations dans lesquelles ces procédures font défaut ou même sont absentes, et dans lesquelles le personnel est mal ou insuffisamment formé.

Nettoyage, désinfection et stérilisation, quelques notions de base :

NETTOYAGE ET PRE-NETTOYAGE

Alors que le « nettoyage » signifie l'élimination de la saleté visible, le terme « pré-nettoyage » fait référence à l'élimination des fluides corporels et d'autres contaminants avant la désinfection ou la stérilisation.

Un pré-nettoyage adéquat peut réduire considérablement la charge microbienne d'agents pathogènes, tandis que l'élimination des résidus organiques et inorganiques peut faciliter le processus de reconditionnement.

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Un nettoyage méticuleux est essentiel pour une désinfection ou une stérilisation efficace

Un nettoyage et un pré-nettoyage efficaces des appareils nécessitent souvent des produits chimiques, associés à une action mécanique et à la chaleur.

Elle peut être réalisée manuellement et/ou avec des machines automatisées.

Le pré-nettoyage manuel nécessite l'utilisation de détergents ou d'enzymes combinés à une activité mécanique effectuée par l'opérateur (frottement, brossage, rinçage) pour éliminer les salissures de l'extérieur et de l'intérieur des appareils à retraiter.

Après le nettoyage ou la désinfection, les dispositifs doivent être soigneusement rincés pour éliminer tout résidu chimique, puis séchés selon les recommandations du fabricant.

Tous les dispositifs retraités doivent être stockés correctement pour éviter tout dommage ou recontamination.

NETTOYAGE, DÉSINFECTION ET STÉRILISATION : LA CLASSIFICATION DE SPAULDING

En 1968, Spaulding a classé les dispositifs médicaux/chirurgicaux comme critiques, semi-critiques et non critiques en fonction de leur potentiel de propagation des infections.

Les dispositifs critiques pénètrent normalement dans les tissus stériles, le système vasculaire ou les systèmes à travers lesquels le sang circule ; des exemples sont les instruments chirurgicaux et les cathéters vasculaires.

Ces dispositifs doivent être pré-nettoyés et stérilisés correctement et en toute sécurité avant utilisation.

Les dispositifs semi-critiques entrent en contact avec des muqueuses intactes ou une peau non intacte ; des exemples sont les endoscopes à fibre optique, les sondes vaginales et la respiration assistée équipements.

Ces articles nécessitent un pré-nettoyage approprié et, au moins, une désinfection de haut niveau avant utilisation.

Les dispositifs non critiques (tels que les brassards de tensiomètre, les stéthoscopes) qui entrent en contact avec une peau intacte présentent un faible risque de propagation d'infections, à l'exception du transfert d'agents pathogènes aux mains du personnel de santé.

Un nettoyage et un essuyage périodiques de ces dispositifs avec un détergent neutre ou une solution à 70 % d'eau et d'éthanol sont généralement suffisants (les bassines réutilisables, bien que considérées comme des dispositifs non critiques, nécessitent un nettoyage, un lavage et une désinfection plus rigoureux, surtout en cas de contamination par, par exemple, les entérocoques résistants à la vancomycine ou Clostridium difficile sont suspectés).

La plupart des surfaces environnementales dans la chambre du patient et les salles d'attente doivent être considérées comme non critiques et ne nécessitent pas de désinfection de routine.

Cependant, les surfaces avec une fréquence de contact élevée, en particulier celles à proximité immédiate du patient, nécessitent une décontamination régulière pour éviter le transfert d'agents pathogènes aux mains du personnel soignant.

Il n'y a aucune indication spécifique dans les directives récentes si, quand, comment et à quelle fréquence ces surfaces doivent être décontaminées. 9,10.

Bien que le système de classification de Spaulding 7 reste valable, il doit être adapté aux besoins actuels.

Les prions avec leur résistance inhabituelle aux agents physiques et chimiques 11 et l'émergence d'infections liées aux soins causées par les spores de Clostridium difficile 10 ou les entérobactéries résistantes aux carbapénémiques 12 conduisent à réexaminer le retraitement des dispositifs médicaux.

Les dispositifs contaminés par des prions nécessitent des protocoles de stérilisation bien au-delà de ceux normalement utilisés 11.

Certains désinfectants (par exemple les aldéhydes) habituellement utilisés pour retraiter les endoscopes gastro-intestinaux nécessitent des temps de contact prolongés pour tuer les spores de C. difficile.

Les dispositifs sensibles à la chaleur tels que les endoscopes flexibles à fibres optiques sont de plus en plus utilisés pour des opérations dans lesquelles l'intégrité de la membrane muqueuse est délibérément violée, franchissant ainsi la ligne entre les dispositifs «critiques» et «semi-critiques».

LE RETRAITEMENT DES DISPOSITIFS MÉDICAUX : LA DÉSINFECTION

« Désinfection » signifie réduire le nombre d'agents pathogènes sur une surface ou un objet inanimé en utilisant de la chaleur, des produits chimiques ou les deux.

La plupart des procédures de désinfection ont peu d'activité contre les spores bactériennes ; toute réduction de la quantité de spores est principalement obtenue par action mécanique et lavage.

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NETTOYAGE, DÉSINFECTION ET STÉRILISATION : PASTEURISATION ET ÉBULLITION

Les appareils semi-critiques, tels que ceux utilisés pour la thérapie respiratoire ou l'équipement d'anesthésie, peuvent être pasteurisés par chauffage dans l'eau.

Toutes leurs pièces doivent rester complètement immergées pendant au moins 30 minutes à 65-77°C.

Dans les endroits à des altitudes plus élevées, il faut plus de temps pour atteindre le point d'ébullition de l'eau, car celui-ci augmente à mesure que l'on s'éloigne du niveau de la mer. 13

Le trempage des dispositifs résistants à la chaleur dans de l'eau bouillante pendant environ 10 minutes peut réduire considérablement la charge microbienne d'agents pathogènes, mais ne doit jamais être considéré comme une «stérilisation».

La pasteurisation et l'ébullition sont donc des méthodes rudimentaires et sans produits chimiques (tant que l'eau est pure) ; une fois traités, les articles doivent être manipulés avec soin pour un transport et un stockage en toute sécurité.

NETTOYAGE, DÉSINFECTION ET STÉRILISATION : DÉSINFECTION CHIMIQUE

Les désinfectants chimiques courants comprennent les alcools, le chlore et les composés chlorés, le glutaraldéhyde, l'orthophtalaldéhyde, le peroxyde d'hydrogène, l'acide peracétique, les phénols et les composés d'ammonium quaternaire (CAQ).

Ces produits chimiques peuvent être utilisés seuls ou en combinaison.

Ils doivent être utilisés conformément aux instructions du fabricant figurant sur l'étiquette du produit et uniquement sur les surfaces avec lesquelles ils sont compatibles.

Idéalement, les produits commerciaux devraient passer des tests standard pour confirmer ce qui est indiqué sur l'étiquette avant d'être vendus et utilisés dans les établissements de santé.

Cependant, les exigences d'enregistrement des produits et ce qui est déclaré sur l'étiquette varient considérablement d'une région à l'autre.

Les désinfectants chimiques varient considérablement en termes d'effets nocifs qu'ils peuvent causer aux humains et à l'environnement ; ils doivent être utilisés avec précaution et uniquement lorsqu'aucune alternative viable n'est disponible.

Les désinfectants sont divisés en trois catégories selon leur activité microbicide : Désinfectants de haut niveau

Les désinfectants de haut niveau (DAL) sont actifs contre les bactéries sous forme végétative, les virus (y compris les virus non cachés), les champignons et les mycobactéries. Avec des temps de contact prolongés, ils peuvent également avoir une activité contre les spores bactériennes.

Les DAL sont utilisés pour désinfecter les appareils sensibles à la chaleur et les appareils semi-critiques tels que les endoscopes à fibre optique flexibles.

Les aldéhydes (glutaraldéhyde et orthophtalaldéhyde) et les oxydants (par exemple le peroxyde d'hydrogène et l'acide peracétique) sont des DAL.

Les aldéhydes ne sont pas corrosifs et peuvent être utilisés en toute sécurité sur la plupart des appareils.

Cependant, ils peuvent favoriser l'adhésion des matériaux organiques ; par conséquent, il est particulièrement important d'éliminer tous les micro-organismes attachés avant la désinfection.

S'ils ne sont pas correctement formulés et utilisés, les oxydants peuvent être corrosifs.

Cependant, ils peuvent agir plus rapidement, ne pas fixer et être plus sûrs pour l'environnement que les aldéhydes.

Selon la température, les DAL nécessitent généralement 10 à 45 minutes de temps de contact.

Après la désinfection, les appareils doivent être soigneusement lavés avec de l'eau stérile ou microfiltrée pour éliminer tout produit chimique résiduel ; les appareils doivent ensuite être séchés en faisant passer une solution à base d'alcool ou en soufflant de l'air propre et filtré à travers les canaux de l'appareil avant de les ranger.

Désinfectants de niveau moyen

Un désinfectant (par exemple l'éthanol) actif contre les bactéries sous forme végétative, les mycobactéries, les mycètes et la plupart des virus.

Même après une exposition prolongée, il peut ne pas être capable de tuer les spores.

Désinfectants de bas niveau

Les désinfectants de bas niveau (par exemple les composés d'ammonium quaternaire) sont actifs contre les bactéries sous forme végétative (à l'exception des mycobactéries), certains mycètes et uniquement les virus enrobés.

Dans de nombreux cas, un lavage avec du savon non antiseptique et de l'eau suffirait à la place de ces désinfectants.

STÉRILISATION

La stérilisation est tout processus qui peut inactiver tous les micro-organismes trouvés dans ou sur un objet ; les procédures de stérilisation standard peuvent nécessiter des variations d'activité sur les prions.11

La chaleur est le moyen de stérilisation le plus fiable ; la plupart des instruments chirurgicaux sont résistants à la chaleur.

La chaleur humide, utilisée dans un autoclave sous forme de vapeur sous pression, tue les micro-organismes en dénaturant leurs protéines.

La chaleur sèche utilisée dans un four tue par oxydation, grâce à un processus beaucoup plus lent.

La chaleur sèche est utilisée pour stériliser les matériaux sensibles à l'humidité (poudres anhydres) ou les articles que la vapeur ne peut pas pénétrer (huiles et cires).

Les appareils sensibles à la chaleur nécessitent une stérilisation à basse température ; l'oxyde d'éthylène (EO), le plasma gazeux au peroxyde d'hydrogène et la vapeur de formaldéhyde sont souvent utilisés à cette fin.14

Les dispositifs stérilisés doivent être stockés dans un endroit propre, sans poussière et sec et l'intégrité de l'emballage doit être garantie.

Les emballages contenant des fournitures stériles doivent être vérifiés avant utilisation pour l'intégrité de la barrière et l'absence d'humidité.

Si l'emballage est endommagé, les appareils ne doivent pas être utilisés, mais nettoyés, emballés et stérilisés à nouveau.

Stérilisation à la vapeur La vapeur est le moyen de stérilisation le plus fiable.

Il est non toxique (lorsqu'il est généré à partir d'eau exempte de produits chimiques volatils), possède une activité microbicide à large spectre et une bonne capacité de pénétration, et est peu coûteux et facile à contrôler.15,16

La stérilisation nécessite un contact direct entre l'objet à stériliser et la vapeur, à une température et une pression requises pendant un temps donné.

Les autoclaves sont des chambres spécialement conçues où la vapeur sous pression génère des températures élevées.

Ils sont basés sur le même principe que l'autocuiseur.

Il existe deux principaux types de stérilisateurs à vapeur :

– Dans les autoclaves à évacuation par gravité (vers le bas), de la vapeur est introduite dans le haut de la chambre pour éliminer le mélange air-vapeur plus froid et plus dense du fond de la chambre. La soupape d'échappement se ferme lorsque tout l'air a été éliminé, ce qui permet à la pression et à la température d'augmenter. De tels autoclaves sont utilisés pour stériliser des liquides et des objets dans des enceintes que la vapeur peut pénétrer. La phase de stérilisation dure habituellement environ 15 minutes à 121°C à 103.4 kilopascals (15 livres/pouce carré).

– Dans les autoclaves à vide poussé, un vide est d'abord créé dans la chambre de stérilisation, puis de la vapeur est introduite, permettant une entrée de vapeur plus rapide et plus efficace dans toute la charge. La pression et la température augmentant rapidement permettent des durées de traitement de trois minutes à 134°C à environ 206.8 kilopascals (30 livres/pouce carré).

Les instruments à autoclaver doivent être emballés dans des matériaux qui permettent à la vapeur de pénétrer et de garder le dispositif traité stérile pendant le stockage.

La surcharge de l'autoclave doit être évitée pour permettre un libre accès à la vapeur dans toute la charge.

Les emballages doivent être marqués pour identifier leur contenu et la date de stérilisation ainsi que le numéro de série et le numéro de cycle de l'opérateur pour faciliter tout rappel et faciliter la rotation des fournitures.

Tous les stérilisateurs à vapeur doivent être analysés au moment de l'installation et régulièrement par la suite ; des enregistrements doivent être conservés de toutes les opérations et de l'entretien de routine. Tout le personnel doit être parfaitement formé à l'utilisation en toute sécurité de l'autoclave6.

CONTRÔLES DANS LES PROCESSUS DE NETTOYAGE, DÉSINFECTION ET STÉRILISATION

Des indicateurs biologiques et chimiques sont disponibles et doivent être utilisés pour la surveillance de routine des autoclaves.

Les indicateurs biologiques (IB) contiennent des spores de la bactérie Geobacillus stearothermophilus.

Les spores disponibles dans le commerce ou les bouteilles contenant des spores sont stratégiquement placées dans la charge à stériliser.

Après un cycle, les IB sont cultivés ou évalués pour la croissance et ne doivent montrer aucune croissance pour revendiquer une stérilisation réussie.

Des indicateurs chimiques (IC) sont utilisés pour évaluer si le temps et la température requis ont été atteints pendant le processus de stérilisation.

Un exemple d'IC ​​est le ruban autoclave, qui peut être apposé à l'extérieur de l'emballage ; le ruban montre un changement de couleur si l'emballage a été exposé à la chaleur.

Bien que les circuits intégrés ne conviennent pas pour indiquer si un produit a été stérilisé, ils peuvent aider à détecter les dysfonctionnements de l'équipement et à identifier les erreurs de procédure.

Pour le procédé sous vide poussé, la pénétration de la vapeur dans la charge dépend d'une évacuation adéquate de l'air.

Cela peut être vérifié de deux manières :

1) Avec un « test de fuite » : le vide peut-il être maintenu ou l'air s'échappe-t-il ? (souvent autour du couvercle).

2) Avec la capacité de la vapeur à pénétrer dans un petit paquet de serviettes utilisé dans le test "Bowie Dick".

Si les résultats de ces contrôles sont satisfaisants, un contrôle alternatif est le « release paramétrique ».

Ce système est basé sur la vérification que le cycle de stérilisation a respecté toutes les spécifications de température, de pression et de temps, en utilisant des instruments calibrés en plus ou à la place des IB.

Étant donné que cette approche est basée sur des données mesurables et des instruments calibrés, les résultats ont tendance à être plus fiables et beaucoup plus rapides que l'utilisation des IB.

AUTRES STÉRILISATEURS

La vapeur est également utilisée dans deux autres types de stérilisateurs.

Dans le procédé vapeur-formaldéhyde à basse température, la vapeur (50-80°C) avec du formaldéhyde à l'état gazeux est utilisée pour stériliser les dispositifs médicaux sensibles à la chaleur (même ceux dont la lumière est restreinte).

Comme d'habitude, les appareils sont nettoyés puis traités. Tout d'abord, un vide est créé ; de la vapeur est introduite par jets successifs suivie d'une vaporisation du formaldéhyde.

A la fin du cycle, le formaldéhyde est éliminé et l'autoclave complètement vidé avec plusieurs jets de vapeur et un vide poussé.

Des indicateurs chimiques et biologiques sont utilisés pour surveiller les performances du stérilisateur.

Ce système ne peut pas être utilisé avec des liquides et la toxicité potentielle du formaldéhyde reste un problème.

Dans le processus de stérilisation rapide ou immédiate (stérilisation flash), la vapeur est utilisée pour traiter les dispositifs critiques tels que les dispositifs chirurgicaux accidentellement contaminés lors d'une opération ou lorsqu'aucun autre moyen de stérilisation n'est disponible.

Il ne doit jamais être utilisé pour des dispositifs implantables ou pour compenser des pénuries de dispositifs essentiels.

Dans la stérilisation rapide d'objets poreux ou non poreux, il n'est pas possible d'utiliser un autoclave avec évacuation de la vapeur par gravité ou sous vide poussé sans emballage ou en utilisant un seul emballage.

Il n'est pas possible d'attendre une lecture des IB utilisés en raison de la rapidité avec laquelle les dispositifs sont retraités.

À moins que les conteneurs appropriés ne soient utilisés, il existe un risque élevé de recontamination des articles traités et également de brûlures du personnel pendant le transport jusqu'au point d'utilisation.

FOUR MICRO ONDE

L'exposition d'objets contenant de l'eau aux micro-ondes crée de la chaleur en raison du frottement généré par la rotation rapide des molécules d'eau.

Jusqu'à présent, ce procédé n'a été utilisé que pour désinfecter les lentilles de contact souples et cautériser les cathéters urinaires.

Cependant, de petits volumes d'eau pourraient être rendus sûrs à des fins alimentaires par exposition aux micro-ondes dans un récipient en verre ou en plastique.

De même, de petits objets en verre ou en plastique peuvent être immergés dans l'eau et « désinfectés » dans un four à micro-ondes.

STÉRILISATION À CHALEUR SÈCHE

Les fours à air chaud sont utilisés pour la stérilisation à la chaleur sèche.

Ils peuvent atteindre des températures élevées et doivent être équipés d'un ventilateur pour une répartition homogène de la chaleur.

Le préchauffage se fait essentiellement avant le démarrage du cycle de stérilisation.

Les fours à air chaud sont de conception plus simple et plus sûrs à utiliser que les autoclaves et conviennent à la stérilisation de la verrerie, des objets métalliques, des poudres et des matériaux anhydres (huile et graisse).

La stérilisation prend deux heures à 160°C ou une heure à 180°C.

Le caoutchouc, le papier et le tissu ne doivent pas être traités afin d'éviter les risques d'incendie.

OXYDE D'ÉTHYLÈNE

L'oxyde d'éthylène (OE) est utilisé pour stériliser les objets sensibles à la chaleur, à la pression ou à l'humidité.

L'OE est un gaz incolore, inflammable, explosif et toxique pour l'homme.

L'OE est disponible sous forme de mélange gazeux avec des hydrochlorofluorocarbures (IFCC) ou il existe un mélange de 8.5 % d'OE et de 91.5 % de dioxyde de carbone ; ce dernier est moins cher.

La concentration d'OE, la température, l'humidité relative et l'exposition doivent être maintenues au bon niveau pendant le processus pour assurer la stérilisation.

La concentration de gaz doit être comprise entre 450 et 1200 mg/L, la température entre 37° et 63°C, l'humidité relative entre 40% et 80% et l'exposition entre 1 et 6 heures.

La publication de valeurs paramétriques n'est pas possible car la concentration de gaz et l'humidité relative ne peuvent pas être facilement mesurées ; l'IB doit être inclus dans chaque chargement.

L'IB recommandé est Bacillus atrophaeus; les chargements doivent être maintenus en quarantaine jusqu'à ce que l'incubation de l'IB soit terminée.

Les principaux inconvénients de la stérilisation avec OE sont les longs temps de cycle et le coût élevé.

Les objets stérilisés doivent être bien ventilés après le processus pour éliminer tous les OE résiduels pour la sécurité du patient.

GAZ PLASMA DE PEROXYDE D'HYDROGÈNE

Le gaz plasma est généré dans une chambre fermée sous vide poussé en utilisant des radiofréquences ou de l'énergie micro-ondes pour exciter les molécules de peroxyde d'hydrogène gazeux et produire des particules chargées, dont beaucoup sont des radicaux libres hautement réactifs.

Le gaz plasma peut être utilisé pour stériliser des objets sensibles à la chaleur et à l'humidité, tels que certains plastiques, appareils électriques/électroniques et alliages métalliques sensibles à la corrosion.

Les spores de G. stearothermophilus sont utilisées comme IB.

Il s'agit d'un processus sûr et, comme aucune aération n'est requise, les articles stérilisés sont disponibles pour une utilisation immédiate ou prêts à être stockés.

Cependant, il ne convient pas aux appareils avec des canaux borgnes, des poudres ou des liquides.

D'autres inconvénients incluent le coût élevé et la nécessité d'un matériau d'emballage spécial car le papier ou le lin ne peuvent pas être utilisés.

De plus, tout résidu liquide ou organique présent interfère avec le processus.

FUMIGATION

Récemment, on s'intéresse de plus en plus à l'utilisation de fumigants dans l'environnement pour lutter contre les agents pathogènes préoccupants pour la santé, tels que S. aureus et C. difficile résistants à la méthicilline.

Une variété d'appareils sont disponibles, dont le coût, le processus utilisé et le type d'essais sur le terrain qu'ils subissent varient.

Une procédure courante consiste à vaporiser une solution de peroxyde d'hydrogène dans une pièce scellée, telle qu'une chambre de patient, pour décontaminer les surfaces.

Aucune aération post-traitement n'est nécessaire car le peroxyde d'hydrogène se dégrade facilement en oxygène et en eau.

Les bandes de spores (IB) sont stratégiquement placées dans toute la pièce et récupérées plus tard pour surveiller l'efficacité du processus.

Les inconvénients comprennent l'incompatibilité avec les matériaux cellulosiques et la corrosion potentielle des appareils électroniques.

Le dioxyde de chlore généré sur place peut être libéré sous forme de gaz pour décontaminer la pièce.

Les pièces doivent non seulement être étanches mais aussi assombries pour éviter que la lumière du soleil n'accélère la dégradation du gaz.

Comme le peroxyde d'hydrogène, le dioxyde de chlore se dégrade naturellement en sous-produits inoffensifs.

L'ozone peut décontaminer les surfaces dans les espaces clos ; il est très instable et potentiellement nocif pour une variété de matériaux que l'on trouve normalement dans les établissements de santé.

Cependant, un stérilisateur de dispositif médical à base d'ozone est disponible dans le commerce.

Le gaz est généré à partir d'oxygène et à la fin du cycle le convertit en oxygène et en eau par catalyse.

Une large compatibilité matérielle et la capacité de gérer des dispositifs à canal fin sont revendiquées pour cet instrument.

RAYONNEMENT ULTRAVIOLET

Les progrès récents de la technologie de la lumière ultraviolette (UV) rendent le potentiel microbicide du rayonnement UV à courte portée utile pour une variété d'utilisations.

Les lampes UV sont largement utilisées pour la désinfection de l'eau et des eaux usées.

Les appareils à base d'UV sont commercialisés pour la désinfection de l'air dans les hôpitaux et les cliniques afin de réduire la propagation des agents pathogènes en suspension dans l'air.

Ces appareils sont également commercialisés pour la désinfection des surfaces environnementales hospitalières.

Le rayonnement UV n'ajoute aucun produit chimique à l'eau et à l'air traités, à l'exception de la génération de faibles niveaux d'ozone.

Cependant, il ne peut pas pénétrer à travers la saleté et les objets nécessitent une exposition directe aux radiations.

Ces lampes nécessitent un nettoyage normal et un remplacement périodique; ils peuvent émettre de la lumière visible même après que le rayonnement UV a diminué.

Références:

1. Association pour l'avancement de l'instrumentation médicale. Stérilisation chimique et désinfection de haut niveau dans les établissements de santé. ANSI/ AAMI ST58:2013.

2. Association pour l'avancement de l'instrumentation médicale. Guide complet sur la stérilisation à la vapeur et l'assurance de la stérilité dans les établissements de santé. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.

3. Lignes directrices pour le contrôle des infections environnementales dans les établissements de santé ; Recommandations du CDC et du Comité consultatif sur les pratiques de contrôle des infections dans les soins de santé (HICPAC). MMWR 2003 ; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf

4. Agence de réglementation des médicaments et des produits de santé, ministère de la Santé du Royaume-Uni : décontamination et contrôle des infections ; Conseils sur la décontamination et le contrôle des infections, y compris les instruments chirurgicaux, l'équipement dentaire, les endoscopes et les stérilisateurs à vapeur de paillasse, décembre 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438

5. Ministère de la Santé et des Soins de longue durée de l'Ontario. Comité consultatif provincial des maladies infectieuses (CCPMI). Pratiques exemplaires de nettoyage, de désinfection et de stérilisation dans tous les milieux de soins de santé, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.

6. Rutala WA, Weber DJ. Lignes directrices pour la désinfection et la stérilisation dans les établissements de santé, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/Disinfection_Nov_2008.pdf

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8. Norme internationale ISO 15883-3 ; 2010, Laveurs-désinfecteurs. Spécifie des exigences particulières pour les laveurs-désinfecteurs (WD) qui sont destinés à être utilisés pour vider, rincer, nettoyer et désinfecter thermiquement les conteneurs utilisés pour contenir les déchets humains en vue de leur élimination par un cycle de fonctionnement. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078

9. Sattar SA, Maillard JY. Le rôle crucial de l'essuyage dans la décontamination des surfaces environnementales à contact élevé : examen de l'état actuel et des orientations pour l'avenir. Am J Infect Control 2013 ; 41:S97-S104.

10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB, et al. Rôle des surfaces hospitalières dans la transmission d'agents pathogènes émergents associés aux soins de santé : norovirus, Clostridium difficile et espèces d'Acinetobacter. Am J Infect Control 2010 ; 38 (5 Supplément 1):S25-33.

11. Rutala WA, Weber DJ. Lignes directrices pour la désinfection et la stérilisation des instruments médicaux contaminés par des prions. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi : 10.1086/650197.

12. Muscarella LF. Risque de transmission d'entérobactéries résistantes aux carbapénèmes et de " superbactéries " apparentées lors d'une endoscopie gastro-intestinale. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi : 10.4253/wjge.v6.i10.457.

13. Snyder, op. Étalonnage des thermomètres dans l'eau bouillante : Point d'ébullition / Pression atmosphérique / Tables d'altitude. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [dernier accès 17 août 2015]

14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S, et al. Une étude comparative du gaz d'oxyde d'éthylène, du plasma de gaz de peroxyde d'hydrogène et de la stérilisation au formaldéhyde à la vapeur à basse température. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.

15. Seavey R. Désinfection, stérilisation et antisepsie de haut niveau : enjeux actuels du retraitement des instruments médicaux et chirurgicaux. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi : 10.1016/j.ajic.2012.09.030.

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Aussi:

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3. McDonnell G. & Sheard D. Un guide pratique de la décontamination dans les soins de santé. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.

4. Quinn, MM et al. Nettoyage et désinfection des surfaces environnementales dans les soins de santé : vers un cadre intégré pour la prévention des infections et des maladies professionnelles ? Am J Infect Control 2015 ; 43 : 424-434.

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6. Satar SA. Promesses et écueils des progrès récents des moyens chimiques de prévention de la propagation des infections nosocomiales par les surfaces environnementales. Am J Infect Control 2010; 38 : S34-40.

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IFIC

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