Rengjøring, desinfeksjon og sterilisering av helseavdelinger og miljøer

Rengjøring, desinfeksjon og sterilisering er hjørnesteinene i infeksjonsforebygging og -kontroll i helsevesen og miljøer

Til tross for disse bevisene, er det mange situasjoner der disse prosedyrene mangler eller til og med fraværende, og hvor personalet er dårlig eller utilstrekkelig trent.

Rengjøring, desinfeksjon og sterilisering, noen grunnleggende konsepter:

RENGJØRING OG FORRENGJØRING

Mens "rengjøring" betyr fjerning av synlig smuss, refererer begrepet "forrens" til fjerning av kroppsvæsker og andre forurensninger før desinfeksjon eller sterilisering.

Tilstrekkelig forhåndsrengjøring kan redusere den mikrobielle belastningen av patogener betydelig, mens fjerning av organiske og uorganiske rester kan lette rekondisjoneringsprosessen.

VIL DU VITE MER OM AMBULANSEMONTERINGSSEKTOREN? BESØK MARIANI FRATELLI STAND PÅ NØDSTILLING

Omhyggelig rengjøring er avgjørende for effektiv desinfeksjon eller sterilisering

Effektiv rengjøring og forhåndsrengjøring av enheter krever ofte kjemikalier, kombinert med mekanisk påvirkning og varme.

Det kan utføres manuelt og/eller med automatiserte maskiner.

Manuell forhåndsrengjøring krever bruk av vaskemidler eller enzymer kombinert med en mekanisk aktivitet utført av operatøren (gnidning, børsting, spyling) for å fjerne skitt fra utsiden og innsiden av enhetene som reprosesseres.

Etter rengjøring eller desinfisering må enhetene skylles grundig for å fjerne eventuelle kjemiske rester og deretter tørkes som anbefalt av produsenten.

Alle gjenbearbeidede enheter må oppbevares riktig for å unngå skade eller rekontaminering.

RENGJØRING, DESINFISERING OG STERILISERING: SPAULDING-KLASSIFISERINGEN

I 1968 klassifiserte Spaulding medisinsk/kirurgisk utstyr som kritisk, semi-kritisk og ikke-kritisk basert på deres potensial til å spre infeksjon.

Kritiske enheter kommer normalt inn i sterilt vev, det vaskulære systemet eller systemer som blodet strømmer gjennom; eksempler er kirurgiske instrumenter og vaskulære katetre.

Disse enhetene må forhåndsrenses og steriliseres ordentlig og trygt før bruk.

Halvkritiske enheter kommer i kontakt med intakte slimhinner eller ikke-intakt hud; eksempler er fiberoptiske endoskoper, vaginale prober og assistert pusting utstyr.

Disse elementene krever riktig forhåndsrengjøring og i det minste desinfeksjon på høyt nivå før bruk.

Ikke-kritiske enheter (som blodtrykksmansjetter, stetoskoper) som kommer i kontakt med intakt hud har lav risiko for å spre infeksjoner, bortsett fra overføring av patogener til hendene på helsepersonell.

Periodisk rengjøring og tørking av disse enhetene med et nøytralt rengjøringsmiddel eller en 70 % løsning av vann og etanol er vanligvis tilstrekkelig (gjenbrukbare kjeler, selv om de anses som ikke-kritiske enheter, krever strengere rengjøring, vask og desinfeksjon, spesielt ved forurensning med f. for eksempel mistenkes vankomycin-resistente enterokokker eller Clostridium difficile).

De fleste miljøoverflater på pasientrom og venterom er å betrakte som ikke-kritiske og krever ikke rutinemessig desinfeksjon.

Imidlertid krever overflater med høy kontaktfrekvens, spesielt de i umiddelbar nærhet av pasienten, regelmessig dekontaminering for å unngå overføring av patogener til hendene på omsorgspersonell.

Det er ingen spesifikk indikasjon i nyere retningslinjer om, når, hvordan og hvor ofte slike overflater skal dekontamineres. 9,10.

Selv om klassifiseringssystemet til Spaulding 7 fortsatt er gyldig, må det tilpasses dagens behov.

Prioner med deres uvanlige motstand mot fysiske og kjemiske midler 11 og fremveksten av omsorgsrelaterte infeksjoner forårsaket av Clostridium difficile-sporer 10 eller karbapenemika-resistente Enterobacteriaceae 12 driver en ny undersøkelse av reprosessering av medisinsk utstyr.

Enheter som er kontaminert med prioner krever steriliseringsprotokoller langt utover de som vanligvis brukes 11.

Noen desinfeksjonsmidler (f.eks. aldehyder) som vanligvis brukes til å reprosessere gastrointestinale endoskoper trenger lengre kontakttider for å drepe C. difficile-sporer.

Varmefølsomme enheter som fleksible fiberoptiske endoskoper brukes i økende grad til operasjoner der integriteten til slimhinnen bevisst krenkes, og dermed krysser grensen mellom "kritiske" og "semi-kritiske" enheter.

GENBEHANDLING AV MEDISINSK UTSTYR: DESINFISERING

"Desinfeksjon" betyr å redusere antall patogener på en livløs overflate eller gjenstand ved å bruke varme, kjemikalier eller begge deler.

De fleste desinfeksjonsprosedyrer har liten aktivitet mot bakteriesporer; enhver reduksjon i mengden sporer oppnås hovedsakelig ved mekanisk handling og vasking.

ANTALLET I AMBULANSEMONTERING I ITALIA: BESØK ORION -STOVEN PÅ NØDSTILLING

RENGJØRING, DESINFISERING OG STERILISERING: PASTEURISERING OG KOKING

Halvkritiske enheter, som de som brukes til respiratorbehandling eller anestesiutstyr, kan pasteuriseres ved oppvarming i vann.

Alle delene må forbli helt nedsenket i minst 30 minutter ved 65-77°C.

På steder i større høyder kreves det mer tid for å nå kokepunktet til vannet, siden dette øker når man beveger seg bort fra havnivået. 13. XNUMX

Bløtlegging av varmebestandige enheter i kokende vann i ca. 10 minutter kan redusere den mikrobielle belastningen av patogener betydelig, men bør aldri betraktes som "sterilisering".

Pasteurisering og koking er derfor lavteknologiske, kjemikaliefrie metoder (så lenge vannet er rent); når de er behandlet, må gjenstandene håndteres med forsiktighet for sikker transport og lagring.

RENGJØRING, DESINFISERING OG STERILISERING: KJEMISK DESINFISERING

Vanlige kjemiske desinfeksjonsmidler inkluderer alkoholer, klor og klorforbindelser, glutaraldehyd, orto-ftalaldehyd, hydrogenperoksid, pereddiksyre, fenoler og kvaternære ammoniumforbindelser (CAQ).

Disse kjemikaliene kan brukes alene eller i kombinasjon.

De skal brukes i henhold til produsentens anvisninger på produktetiketten, og kun på overflater som de er kompatible med.

Ideelt sett bør kommersielle produkter bestå standardtester for å støtte det som står på etiketten før de selges og brukes i helseinstitusjoner.

Kravene til registrering av produkter og hva som er deklarert på etiketten varierer imidlertid mye fra region til region.

Kjemiske desinfeksjonsmidler varierer mye når det gjelder de skadelige effektene de kan forårsake for mennesker og miljø; de skal brukes med forsiktighet og kun når det ikke finnes noen levedyktige alternativer.

Desinfeksjonsmidler er delt inn i tre kategorier i henhold til deres mikrobicide aktivitet: Høynivådesinfeksjonsmidler

Høynivådesinfeksjonsmidler (DAL) er aktive mot bakterier i vegetativ form, virus (inkludert ikke-tildekte virus), sopp og mykobakterier. Ved lengre kontakttider kan de også ha aktivitet mot bakteriesporer.

DAL-er brukes til å desinfisere varmefølsomme enheter og semikritiske enheter som fleksible fiberoptiske endoskoper.

Aldehyder (glutaraldehyd og ortoftalaldehyd) og oksidanter (f.eks. hydrogenperoksid og pereddiksyre) er DAL.

Aldehyder er ikke-etsende og er trygge for bruk på de fleste enheter.

Imidlertid kan de fremme vedheft av organiske materialer; derfor er det spesielt viktig å fjerne eventuelle vedlagte mikroorganismer før desinfeksjon.

Hvis de ikke er riktig formulert og brukt, kan oksidasjonsmidler være etsende.

Imidlertid kan de være raskere virkende, ikke-fikserende og tryggere for miljøet enn aldehyder.

Avhengig av temperatur krever DAL-er vanligvis 10 til 45 minutter kontakttid.

Etter desinfeksjon krever enhetene grundig vask med sterilt eller mikrofiltrert vann for å fjerne eventuelle gjenværende kjemikalier; enhetene må deretter tørkes ved å føre en alkoholbasert løsning eller blåse ren, filtrert luft gjennom enhetens kanaler før lagring.

Middels desinfeksjonsmidler

Et desinfeksjonsmiddel (f.eks. etanol) aktivt mot bakterier i vegetativ form, mykobakterier, myceter og de fleste virus.

Selv etter langvarig eksponering kan det hende at det ikke er i stand til å drepe sporer.

Desinfeksjonsmidler på lavt nivå

Lav-nivå desinfeksjonsmidler (f.eks. kvaternære ammoniumforbindelser) er aktive mot bakterier i vegetativ form (unntatt mykobakterier), noen myceter og kun belagte virus.

I mange tilfeller vil vask med ikke-antiseptisk såpe og vann være tilstrekkelig i stedet for slike desinfeksjonsmidler.

STERILISERING

Sterilisering er enhver prosess som kan inaktivere alle mikroorganismer som finnes i eller på en gjenstand; standard steriliseringsprosedyrer kan kreve variasjoner i aktivitet på prioner.11

Varme er den mest pålitelige steriliseringsmetoden; de fleste kirurgiske instrumenter er varmebestandige.

Fuktig varme, brukt i en autoklav som damp under trykk, dreper mikroorganismer ved å denaturere proteinene deres.

Tørr varme brukt i en ovn dreper ved oksidasjon, gjennom en mye langsommere prosess.

Tørr varme brukes til å sterilisere fuktighetsfølsomme materialer (vannfrie pulvere) eller gjenstander som damp ikke kan trenge inn (oljer og voks).

Varmefølsomme enheter krever sterilisering ved lav temperatur; etylenoksid (EO), hydrogenperoksid gass-plasma og formaldehyddamp brukes ofte til dette formålet.14

Steriliserte enheter må oppbevares på et rent, støvfritt og tørt sted og integriteten til emballasjen må garanteres.

Pakker som inneholder sterile forsyninger må kontrolleres før bruk for barriereintegritet og fravær av fuktighet.

Hvis emballasjen er kompromittert, må enhetene ikke brukes, men rengjøres, pakkes og steriliseres på nytt.

Dampsterilisering Damp er den mest pålitelige steriliseringsmetoden.

Det er ikke-giftig (når det genereres fra vann fritt for flyktige kjemikalier), har bredspektret mikrobicid aktivitet og god penetreringsevne, og er billig og lett å kontrollere.15,16

Sterilisering krever direkte kontakt mellom gjenstanden som skal steriliseres og dampen, ved nødvendig temperatur og trykk i en gitt tid.

Autoklaver er spesialdesignede kammer hvor damp under trykk genererer høye temperaturer.

De er basert på samme prinsipp som trykkokeren.

Det er to hovedtyper av dampsterilisatorer:

– I autoklaver med tyngdekraftsfjerning (nedover), føres damp inn i toppen av kammeret for å fjerne den kaldere, tettere luft-dampblandingen fra bunnen av kammeret. Eksosventilen lukkes når all luften er fjernet, noe som lar trykket og temperaturen øke. Slike autoklaver brukes til å sterilisere væsker og gjenstander i innhegninger som damp er i stand til å trenge gjennom. Steriliseringsfasen varer vanligvis ca. 15 minutter ved 121°C ved 103.4 kilopascal (15 lbs/square tomme).

– I høyvakuumautoklaver skapes først et vakuum i steriliseringskammeret og deretter tilføres damp, noe som tillater raskere og mer effektiv dampinntrengning gjennom hele lasten. Det raskt økende trykket og temperaturen tillater prosesstider på tre minutter ved 134°C ved omtrent 206.8 kilopascal (30 pund/kvadrattommer).

Instrumenter som skal autoklaveres må pakkes inn i materialer som lar damp trenge inn og holder den behandlede enheten steril under lagring.

Overbelastning av autoklaven må unngås for å gi fri tilgang til damp gjennom hele lasten.

Pakkene må merkes for å identifisere innholdet og steriliseringsdatoen samt operatørens serienummer og syklusnummer for å lette eventuell tilbakekalling og for å lette rotasjon av forsyninger.

Alle dampsterilisatorer må analyseres ved installasjonstidspunktet og regelmessig deretter; Det skal føres journal over all drift og rutinemessig vedlikehold. Alt personell må være grundig opplært i sikker bruk av autoklaven6.

KONTROLLER I RENGJØRINGS-, DESINFISERINGS- OG STERILISERINGSPROSESSER

Biologiske og kjemiske indikatorer er tilgjengelige og må brukes til rutinemessig overvåking av autoklaver.

Biologiske indikatorer (IB) inneholder sporer av bakterien Geobacillus stearothermophilus.

Kommersielt tilgjengelige sporer eller flasker som inneholder sporer er strategisk plassert i lasten som skal steriliseres.

Etter en syklus blir IB-ene dyrket eller evaluert for vekst og må ikke vise noen vekst for å kreve vellykket sterilisering.

Kjemiske indikatorer (CI-er) brukes for å vurdere om nødvendig tid og temperatur er oppnådd under steriliseringsprosessen.

Et eksempel på en CI er autoklavetapen, som kan festes på utsiden av pakken; tapen viser en fargeendring hvis pakken har vært utsatt for varme.

Selv om IC-er ikke er egnet for å indikere om et produkt er sterilisert, kan de hjelpe med å oppdage utstyrsfeil og identifisere prosedyrefeil.

For høyvakuumprosessen avhenger damppenetrering inn i lasten av tilstrekkelig luftfjerning.

Dette kan sjekkes på to måter:

1) Med en 'lekkasjetest': kan vakuumet opprettholdes eller vil luft slippe ut? (ofte rundt lokket).

2) Med dampens evne til å trenge gjennom en liten pakke med håndklær brukt i 'Bowie Dick'-testen.

Hvis resultatene av disse kontrollene er tilfredsstillende, er en alternativ kontroll "parametrisk utgivelse".

Dette systemet er basert på å kontrollere at steriliseringssyklusen har oppfylt alle spesifikasjoner for temperatur, trykk og tid, ved å bruke kalibrerte instrumenter i tillegg til eller i stedet for IB-er.

Siden denne tilnærmingen er basert på målbare data og kalibrerte instrumenter, har resultatene en tendens til å være mer pålitelige og mye raskere enn å bruke IB-er.

ANDRE STERILISERINGSMIDLER

Damp brukes også i to andre typer sterilisatorer.

I lavtemperatur-damp-formaldehyd-prosessen brukes damp (50-80°C) med formaldehyd i gassform for å sterilisere varmefølsomme medisinske enheter (selv de med begrenset lumen).

Som vanlig blir enhetene rengjort og deretter behandlet. Først skapes et vakuum; damp introduseres i påfølgende stråler etterfulgt av fordampning av formaldehydet.

På slutten av syklusen fjernes formaldehydet og autoklaven tømmes fullstendig med flere dampstråler og høyvakuum.

Kjemiske og biologiske indikatorer brukes til å overvåke ytelsen til sterilisatoren.

Dette systemet kan ikke brukes med væsker, og den potensielle toksisiteten til formaldehyd er fortsatt et problem.

I den raske eller umiddelbare steriliseringsprosessen (blitssterilisering) brukes damp til å behandle kritiske enheter som kirurgisk utstyr som ved et uhell er forurenset under en operasjon eller når ingen andre steriliseringsmetoder er tilgjengelige.

Den skal aldri brukes til implanterbare enheter eller for å kompensere for mangel på viktige enheter.

Ved rask sterilisering av porøse eller ikke-porøse gjenstander er det ikke mulig å bruke en autoklav med fjerning av gravitasjonsdamp eller høyvakuum uten å pakke inn eller bruke en enkelt innpakning.

Det er ikke mulig å vente på en avlesning av IB-ene som brukes på grunn av hurtigheten som enheter behandles med.

Med mindre de riktige beholderne brukes, er det stor risiko for rekontaminering av de behandlede gjenstandene og også for brannskader under transport til bruksstedet.

MIKROBØLGE

Å utsette gjenstander som inneholder vann for mikrobølger skaper varme på grunn av friksjonen som genereres av den raske rotasjonen av vannmolekyler.

Så langt har denne prosessen kun blitt brukt til å desinfisere myke kontaktlinser og kauterisere urinkatetre.

Imidlertid kan små mengder vann gjøres trygge for matformål ved eksponering for mikrobølger i en glass- eller plastbeholder.

På samme måte kan små glass- eller plastgjenstander senkes i vann og 'desinfiseres' i en mikrobølgeovn.

TØRRVARMESTERILISERING

Varmluftsovner brukes til tørrvarmesterilisering.

De kan nå høye temperaturer og bør utstyres med vifte for jevn varmefordeling.

Forvarming er i hovedsak før du starter steriliseringssyklusen.

Varmluftovner er enklere i design og sikrere å bruke enn autoklaver og er egnet for sterilisering av glassvarer, metallgjenstander, pulver og vannfrie materialer (olje og fett).

Sterilisering tar to timer ved 160°C, eller én time ved 180°C.

Gummi, papir og klut skal ikke behandles for å unngå brannfare.

ETYLENOKSID

Etylenoksid (EO) brukes til å sterilisere gjenstander som er følsomme for varme, trykk eller fuktighet.

EO er en fargeløs, brennbar, eksplosiv gass som er giftig for mennesker.

OE er tilgjengelig som en gassblanding med hydroklorfluorkarboner (IFCC) eller det er en blanding av 8.5 % OE og 91.5 % karbondioksid; sistnevnte er rimeligere.

EO-konsentrasjon, temperatur, relativ fuktighet og eksponering må holdes på riktig nivå under prosessen for å sikre sterilisering.

Gasskonsentrasjonen skal være mellom 450 og 1200 mg/L, temperatur mellom 37° og 63°C, relativ fuktighet mellom 40% og 80% og eksponering mellom 1 og 6 timer.

Frigjøring av parametriske verdier er ikke mulig da gasskonsentrasjonen og relativ fuktighet ikke lett kan måles; IB må inkluderes i hver last.

Den anbefalte IB er Bacillus atrophaeus; laster skal holdes i karantene til inkubasjonen av IB er fullført.

De største ulempene med sterilisering med OE er lange syklustider og høye kostnader.

De steriliserte gjenstandene må være godt ventilert etter prosessen for å fjerne all gjenværende OE for pasientsikkerhet.

HYDROGENPEROKSID PLASMA GASS

Plasmagass genereres i et lukket kammer under høyvakuum ved bruk av radiofrekvenser eller mikrobølgeenergi for å eksitere hydrogenperoksidgassmolekyler og produsere ladede partikler, hvorav mange er svært reaktive frie radikaler.

Plasmagass kan brukes til å sterilisere varme- og fuktighetsfølsomme gjenstander, for eksempel visse typer plast, elektriske/elektroniske enheter og korrosjonsfølsomme metallegeringer.

Sporer av G. stearothermophilus brukes som IB.

Dette er en sikker prosess, og siden det ikke er nødvendig med lufting, er steriliserte gjenstander tilgjengelige for umiddelbar bruk eller klare for lagring.

Den er imidlertid ikke egnet for enheter med blindkanaler, pulver eller væsker.

Andre ulemper inkluderer de høye kostnadene og behovet for spesielt emballasjemateriale da papir eller lin ikke kan brukes.

I tillegg forstyrrer eventuelle flytende eller organiske rester prosessen.

FUMIGERING

Nylig har det vært økt interesse for bruk av desinfiseringsmidler i miljøet for å bekjempe sykdomsfremkallende helseproblemer, slik som meticillin-resistente S. aureus og C. difficile.

En rekke enheter er tilgjengelige, varierende i pris, prosessen som brukes og typen felttesting de gjennomgår.

En vanlig prosedyre er å fordampe en hydrogenperoksidløsning i et lukket rom, for eksempel et pasientrom, for å dekontaminere overflater.

Ingen etterbehandlingslufting er nødvendig fordi hydrogenperoksid lett brytes ned til oksygen og vann.

Sporestrips (IB) er strategisk plassert i hele rommet og hentet senere for å overvåke effektiviteten av prosessen.

Ulemper inkluderer inkompatibilitet med cellulosematerialer og potensiell korrosjon av elektroniske enheter.

Klordioksidet som genereres på stedet, kan frigjøres som en gass for å dekontaminere rommet.

Rom må ikke bare forsegles, men også gjøres mørkere for å forhindre at sollys akselererer nedbrytningen av gassen.

Som hydrogenperoksid brytes klordioksid naturlig ned til ufarlige biprodukter.

Ozon kan dekontaminere overflater i lukkede rom; det er svært ustabilt og potensielt skadelig for en rekke materialer som vanligvis finnes i helseinstitusjoner.

Imidlertid er en ozonbasert sterilisator for medisinsk utstyr kommersielt tilgjengelig.

Gassen genereres fra oksygen og ved slutten av syklusen omdanner den til oksygen og vann ved katalyse.

Bred materialkompatibilitet og evnen til å håndtere tynnkanalsenheter er hevdet for dette instrumentet.

ULTRAFIOLETT STRÅLING

Nylige fremskritt innen ultrafiolett (UV) lysteknologi gjør det mikrobicidale potensialet til kortdistanse UV-stråling nyttig for en rekke bruksområder.

UV-lamper er mye brukt til desinfisering av vann og avløpsvann.

UV-baserte enheter markedsføres for luftdesinfeksjon på sykehus og klinikker for å redusere spredningen av luftbårne patogener.

Disse enhetene markedsføres også for desinfeksjon av sykehusmiljøer.

UV-stråling tilfører ingen kjemikalier til det behandlede vannet og luften, med unntak av å generere lave nivåer av ozon.

Den kan imidlertid ikke trenge gjennom smuss og gjenstander krever direkte eksponering for stråling.

Slike lamper krever normal rengjøring og periodisk utskifting; de kan sende ut synlig lys selv etter at UV-strålingen er redusert.

Referanser:

1. Foreningen til fremme av medisinsk instrumentering. Kjemisk sterilisering og høynivå desinfeksjon i helseinstitusjoner. ANSI/ AAMI ST58:2013.

2. Foreningen til fremme av medisinsk instrumentering. Omfattende guide til dampsterilisering og sterilitetssikring i helseinstitusjoner. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.

3. Retningslinjer for miljømessig smittevern i helseinstitusjoner; Anbefalinger fra CDC og Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf

4. Medicines and Healthcare Products Regulatory Agency, UK Department of Health: Dekontaminering og infeksjonskontroll; Veiledning om dekontaminering og infeksjonskontroll, inkludert kirurgiske instrumenter, tannutstyr, endoskoper og benchtop-dampsterilisatorer, desember 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438

5. Ontario Ministry of Health & Long Term Care. Provincial Infectious Diseases Advisory Committee (PIDAC). Beste praksis for rengjøring, desinfeksjon og sterilisering i alle helsevesenet, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.

6. Rutala WA, Weber DJ. Retningslinje for desinfeksjon og sterilisering i helseinstitusjoner, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Disinfection_Nov_2008.pdf

7. Spaulding EH. Kjemisk desinfeksjon av medisinske og kirurgiske materialer. Desinfeksjon, sterilisering og konservering, 3. utgave, Block S (Ed), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.

8. Internasjonal standard ISO 15883-3; 2010, Vaske-desinfektorer. Spesifiserer spesielle krav til vaskemaskin-desinfektorer (WD) som er ment å brukes til tømming, spyling, rengjøring og termisk desinfeksjon av beholdere som brukes til å oppbevare menneskelig avfall for avhending i én driftssyklus. http:// www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078

9. Sattar SA, Maillard JY. Den avgjørende rollen til avtørking i dekontaminering av miljøoverflater med høy berøring: Gjennomgang av nåværende status og retninger for fremtiden. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.

10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB, et al. Rollen til sykehusoverflater i overføring av nye helsevesen-assosierte patogener: norovirus, Clostridium difficile og Acinetobacter-arter. Am J Infect Control 2010; 38 (5 Suppl 1):S25-33.

11. Rutala WA, Weber DJ. Retningslinje for desinfeksjon og sterilisering av prionkontaminerte medisinske instrumenter. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.

12. Muscarella LF. Risiko for overføring av karbapenem-resistente Enterobacteriaceae og relaterte "superbugs" under gastrointestinal endoskopi. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.

13. Snyder, OP. Kalibrering av termometre i kokende vann: Kokepunkt / Atmosfærisk trykk / Høydetabeller. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Ultimot tilgang 17. august 2015]

14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S, et al. En sammenlignende studie av etylenoksidgass, hydrogenperoksidgassplasma og lavtemperatur dampformaldehydsterilisering. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.

15. Seavey R. Høynivå desinfeksjon, sterilisering og antisepsis: aktuelle problemer ved reprosessering av medisinske og kirurgiske instrumenter. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.

16. Rutala WA, Weber DJ. Nye utviklinger innen reprosessering av halvkritiske gjenstander. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.

17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA, et al. Forebygging og kontroll av multiresistente gramnegative bakterier: anbefalinger fra en felles arbeidsgruppe. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.

18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ, et al. ESCMID-retningslinjer for håndtering av smitteverntiltak for å redusere overføring av multiresistente gramnegative bakterier hos innlagte pasienter. Clin Microbiol Infect 2014; Vol. 20 (Suppl s1), s. 1–55.

Også:

1. Fraise AP, Maillard YJ og Sattar SA. Prinsipper og praksis for desinfeksjon, konservering og sterilisering. 2013, 5. utgave, Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, England; ISBN-13: 978- 1444333251.

2. McDonnell G. Antisepsis, desinfeksjon og sterilisering: typer, handling og motstand; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. Tilgjengelig elektronisk gjennom Google books http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+disinfect ion,+and+sterilization&hl=en&ei=Z2wvCgBlsAy&ei=Z8wvCgBlsAy&ei=Z8wvCgBlsAy&ei=Z7wvCgBlsAY =book_result&ct=result&res num=1&ved=0CDEQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false

3. McDonnell G. & Sheard D. En praktisk guide til dekontaminering i helsevesenet. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.

4. Quinn, MM et al. Rengjøring og desinfisering av miljøoverflater i helsevesenet: Mot et integrert rammeverk for infeksjon og yrkessykdomsforebygging? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.

5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Karakterisering av Bacillus subtilis spore inaktivering i lavtrykk, lav temperatur gass plasma sterilisering prosesser. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.

6. Sattar SA. Løfter og fallgruver fra nyere fremskritt innen kjemiske metoder for å forhindre spredning av sykehusinfeksjoner fra miljøoverflater. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.

7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Bakteriell forurensning av stetoskoper brukt av helsearbeidere: implikasjoner for folkehelse. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.

8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, et al. Smitteverntiltak for å begrense spredningen av Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Suppl 5):2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs på duodenoskoper: utfordringen med rengjøring og desinfeksjon av gjenbrukbare enheter. J Clin Microbiol 2015: 53:3118-3125.

Les også:

Emergency Live enda mer...Live: Last ned den nye gratisappen til avisen din for iOS og Android

FG MICRO H2O2: Focaccia Group lanserer det nye systemet for desinfeksjon av ambulanser

Rengjøring, desinfeksjon og sterilisering av helseavdelinger og miljøer

Ambulansedesinfeksjon ved hjelp av en kompakt atmosfærisk plasmaenhet: en studie fra Tyskland

Hvordan dekontaminere og rengjøre ambulansen riktig?

Ambulance Båre Vibration: A Study on The Dampening Systems

Rengjøring etter døden, bioremediering og sterilisering i ambulanser

kilde:

IFIC

Du vil kanskje også like