Čištění, dezinfekce a sterilizace zdravotnických prostor a prostředí

By Cristiano Antonino On 25. 2022

Čištění, dezinfekce a sterilizace jsou základními kameny prevence a kontroly infekcí ve zdravotnických prostorách a prostředích

Navzdory těmto důkazům existuje mnoho situací, kdy tyto postupy chybí nebo dokonce chybí a ve kterých je personál špatně nebo nedostatečně vyškolen.

Čištění, dezinfekce a sterilizace, některé základní pojmy:

ČIŠTĚNÍ A PŘEDČIŠTĚNÍ

Zatímco „čištění“ znamená odstranění viditelných nečistot, termín „předčištění“ se týká odstranění tělesných tekutin a jiných nečistot před dezinfekcí nebo sterilizací.

Adekvátní předčištění může podstatně snížit mikrobiální zátěž patogeny, zatímco odstranění organických a anorganických zbytků může usnadnit proces obnovy.

CHCETE VĚDĚT VÍCE O SEKTORU MONTÁŽE AMBULANCE? NAVŠTÍVTE STÁT MARIANI FRATELLI NA EMERGENCY EXPO

Pro účinnou dezinfekci nebo sterilizaci je nezbytné pečlivé čištění

Efektivní čištění a předčištění zařízení často vyžaduje chemikálie v kombinaci s mechanickým působením a teplem.

Lze jej provádět ručně a/nebo pomocí automatizovaných strojů.

Ruční předčištění vyžaduje použití detergentů nebo enzymů v kombinaci s mechanickou činností prováděnou obsluhou (tření, kartáčování, proplachování) k odstranění nečistot z vnějšku i zevnitř repasovaných zařízení.

Po čištění nebo dezinfekci je třeba zařízení důkladně opláchnout, aby se odstranily případné zbytky chemikálií, a poté osušit podle doporučení výrobce.

Všechny repasované prostředky musí být řádně skladovány, aby nedošlo k poškození nebo rekontaminaci.

ČIŠTĚNÍ, DEZINFEKCE A STERILIZACE: KLASIFIKACE SPAULDŮ

V roce 1968 Spaulding klasifikoval lékařské/chirurgické prostředky jako kritické, semikritické a nekritické na základě jejich potenciálu šířit infekci.

Kritická zařízení běžně vstupují do sterilní tkáně, cévního systému nebo systémů, kterými proudí krev; příklady jsou chirurgické nástroje a cévní katétry.

Tato zařízení musí být před použitím řádně a bezpečně předem vyčištěna a sterilizována.

Polokritická zařízení přicházejí do kontaktu s neporušenými sliznicemi nebo neporušenou kůží; příklady jsou endoskopy s optickými vlákny, vaginální sondy a asistované dýchání zařízení.

Tyto předměty vyžadují řádné předčištění a alespoň vysokou úroveň dezinfekce před použitím.

Nekritická zařízení (jako jsou manžety na měření krevního tlaku, stetoskopy), která přicházejí do kontaktu s neporušenou kůží, mají nízké riziko šíření infekcí, s výjimkou přenosu patogenů do rukou zdravotnického personálu.

Pravidelné čištění a otírání těchto zařízení neutrálním detergentem nebo 70% roztokem vody a etanolu je obvykle dostačující (opakovaně použitelné podložní mísy, i když jsou považovány za nekritická zařízení, vyžadují důkladnější čištění, mytí a dezinfekci, zejména při kontaminaci např. je podezření na enterokoky rezistentní na vankomycin nebo Clostridium difficile).

Většinu okolních povrchů v pokoji pacientů a čekárnách je třeba považovat za nekritické a nevyžadují běžnou dezinfekci.

Povrchy s vysokou frekvencí kontaktu, zejména ty v bezprostřední blízkosti pacienta, však vyžadují pravidelnou dekontaminaci, aby se zabránilo přenosu patogenů do rukou ošetřujícího personálu.

Nedávné pokyny neuvádějí žádné konkrétní pokyny, zda, kdy, jak a jak často by měly být takové povrchy dekontaminovány. 9,10.

Přestože klasifikační systém Spaulding 7 zůstává platný, je třeba jej přizpůsobit aktuálním potřebám.

Priony s neobvyklou odolností vůči fyzikálním a chemickým látkám 11 a výskyt infekcí souvisejících s péčí způsobených sporami Clostridium difficile 10 nebo Enterobacteriaceae 12 rezistentními na karbapenemiku vedou k opětovnému zkoumání přepracování zdravotnických prostředků.

Prostředky kontaminované priony vyžadují sterilizační protokoly daleko nad rámec běžně používaných 11.

Některé dezinfekční prostředky (např. aldehydy), které se obvykle používají k regeneraci gastrointestinálních endoskopů, potřebují delší dobu kontaktu, aby zabily spory C. difficile.

Zařízení citlivá na teplo, jako jsou flexibilní endoskopy s optickými vlákny, se stále častěji používají pro operace, při kterých je záměrně narušena integrita sliznice, čímž se překračuje hranice mezi „kritickými“ a „polokritickými“ zařízeními.

ZPĚTNÉ ZPRACOVÁNÍ ZDRAVOTNICKÝCH PROSTŘEDKŮ: DEZINFEKCE

„Dezinfekce“ znamená snížení počtu patogenů na neživém povrchu nebo předmětu pomocí tepla, chemikálií nebo obojího.

Většina dezinfekčních postupů má malou aktivitu proti bakteriálním sporám; případného snížení množství spór se dosahuje především mechanickým působením a promýváním.

ČÍSLO JEDNA V AMBULANCE VHODNÉ V ITÁLII: NAVŠTÍVTE BOX ORION NA EMERGENCY EXPO

ČIŠTĚNÍ, DEZINFEKCE A STERILIZACE: PASTERIZACE A VAŘENÍ

Polokritická zařízení, jako jsou zařízení pro respirační terapii nebo anesteziologické přístroje, lze pasterizovat zahřátím ve vodě.

Všechny jejich části musí zůstat zcela ponořené po dobu nejméně 30 minut při 65-77°C.

V místech ve vyšších nadmořských výškách je k dosažení bodu varu vody potřeba více času, protože se zvyšuje, jak se člověk vzdaluje od hladiny moře. 13

Namáčení tepelně odolných zařízení ve vroucí vodě po dobu asi 10 minut může podstatně snížit mikrobiální zátěž patogeny, ale nikdy by to nemělo být považováno za „sterilizaci“.

Pasterizace a vaření jsou proto technicky nenáročné metody bez chemikálií (pokud je voda čistá); po ošetření se s předměty musí zacházet opatrně, aby byl zajištěn bezpečný transport a skladování.

ČIŠTĚNÍ, DEZINFEKCE A STERILIZACE: CHEMICKÁ DEZINFEKCE

Mezi běžné chemické dezinfekční prostředky patří alkoholy, chlor a sloučeniny chloru, glutaraldehyd, ortho-ftalaldehyd, peroxid vodíku, kyselina peroctová, fenoly a kvartérní amoniové sloučeniny (CAQ).

Tyto chemikálie mohou být použity samostatně nebo v kombinaci.

Musí být používány v souladu s pokyny výrobce na etiketě výrobku a pouze na površích, se kterými jsou kompatibilní.

V ideálním případě by komerční produkty měly před prodejem a použitím ve zdravotnických zařízeních projít standardními testy, aby podpořily to, co je uvedeno na etiketě.

Požadavky na registraci produktů a to, co je deklarováno na etiketě, se však značně liší region od regionu.

Chemické dezinfekční prostředky se značně liší, pokud jde o škodlivé účinky, které mohou způsobit lidem a životnímu prostředí; měly by být používány opatrně a pouze tehdy, když nejsou dostupné žádné životaschopné alternativy.

Dezinfekční prostředky jsou rozděleny do tří kategorií podle jejich mikrobicidní aktivity: Vysoce účinné dezinfekční prostředky

Vysokoúrovňové dezinfekční prostředky (DAL) působí proti bakteriím ve vegetativní formě, virům (včetně neskrytých virů), plísním a mykobakteriím. Při delší době kontaktu mohou také působit proti bakteriálním sporám.

DAL se používají k dezinfekci zařízení citlivých na teplo a semikritických zařízení, jako jsou flexibilní endoskopy s optickými vlákny.

Aldehydy (glutaraldehyd a ortoftalaldehyd) a oxidanty (např. peroxid vodíku a kyselina peroctová) jsou DAL.

Aldehydy jsou nekorozivní a jsou bezpečné pro použití na většině zařízení.

Mohou však podporovat adhezi organických materiálů; proto je zvláště důležité před dezinfekcí odstranit veškeré přichycené mikroorganismy.

Pokud nejsou oxidační činidla správně formulována a používána, mohou být korozivní.

Mohou však působit rychleji, nefixovat a být bezpečnější pro životní prostředí než aldehydy.

V závislosti na teplotě vyžadují DAL obvykle 10 až 45 minut doby kontaktu.

Po dezinfekci zařízení vyžadují důkladné omytí sterilní nebo mikrofiltrovanou vodou, aby se odstranily veškeré zbytky chemikálií; zařízení se pak musí před uskladněním vysušit průchodem roztoku na bázi alkoholu nebo profouknutím čistého filtrovaného vzduchu kanály zařízení.

Dezinfekční prostředky střední úrovně

Dezinfekční prostředek (např. etanol) účinný proti bakteriím ve vegetativní formě, mykobakteriím, mycetám a většině virů.

Ani po delší expozici nemusí být schopen zabíjet spory.

Nízkoúrovňové dezinfekční prostředky

Nízkoúrovňové dezinfekční prostředky (např. kvartérní amoniové sloučeniny) působí proti bakteriím ve vegetativní formě (kromě mykobakterií), některým mycetám a pouze obaleným virům.

V mnoha případech by místo takových dezinfekčních prostředků stačilo mytí neantiseptickým mýdlem a vodou.

STERILIZACE

Sterilizace je jakýkoli proces, který může inaktivovat všechny mikroorganismy nalezené v předmětu nebo na předmětu; standardní sterilizační postupy mohou vyžadovat změny v aktivitě prionů.11

Teplo je nejspolehlivějším způsobem sterilizace; většina chirurgických nástrojů je tepelně odolná.

Vlhké teplo, používané v autoklávu jako pára pod tlakem, zabíjí mikroorganismy denaturací jejich proteinů.

Suché teplo používané v troubě zabíjí oxidací, a to mnohem pomalejším procesem.

Suché teplo se používá ke sterilizaci materiálů citlivých na vlhkost (bezvodé prášky) nebo předmětů, kterými pára nemůže proniknout (oleje a vosky).

Zařízení citlivé na teplo vyžadují sterilizaci při nízké teplotě; K tomuto účelu se často používá ethylenoxid (EO), plynné plazma peroxidu vodíku a formaldehydová pára.14

Sterilizované prostředky musí být skladovány na čistém, bezprašném a suchém místě a musí být zaručena neporušenost obalu.

Balení obsahující sterilní materiál musí být před použitím zkontrolováno na integritu bariéry a nepřítomnost vlhkosti.

Dojde-li k narušení obalu, zařízení se nesmí použít, ale znovu vyčistit, zabalit a sterilizovat.

Parní sterilizace Pára je nejspolehlivější způsob sterilizace.

Je netoxický (je-li vyroben z vody bez těkavých chemikálií), má širokospektrální mikrobicidní aktivitu a dobrou penetrační kapacitu a je levný a snadno se ovládá.15,16

Sterilizace vyžaduje přímý kontakt mezi předmětem, který má být sterilizován, a párou, při požadované teplotě a tlaku po danou dobu.

Autoklávy jsou speciálně navržené komory, kde pára pod tlakem vytváří vysoké teploty.

Jsou založeny na stejném principu jako tlakový hrnec.

Existují dva hlavní typy parních sterilizátorů:

– V autoklávech s gravitačním odstraňováním (směrem dolů) se pára přivádí do horní části komory, aby se odstranila chladnější, hustší směs vzduchu a páry ze dna komory. Výfukový ventil se uzavře po odstranění veškerého vzduchu, což umožní zvýšení tlaku a teploty. Takové autoklávy se používají ke sterilizaci kapalin a předmětů v uzavřených prostorách, kterými je pára schopna proniknout. Sterilizační fáze obvykle trvá asi 15 minut při 121 °C při 103.4 kilopascalech (15 lb/čtvereční palec).

– Ve vysokovakuových autoklávech se nejprve vytvoří vakuum ve sterilizační komoře a poté se zavede pára, což umožňuje rychlejší a efektivnější vstup páry do celé náplně. Rychle rostoucí tlak a teplota umožňují dobu zpracování tři minuty při 134 °C při přibližně 206.8 kilopascalech (30 liber/palec čtvereční).

Nástroje, které mají být autoklávovány, musí být zabaleny do materiálů, které umožňují pronikání páry a udržují ošetřované zařízení během skladování sterilní.

Je třeba se vyvarovat přetížení autoklávu, aby byl umožněn volný přístup páry v celém objemu náplně.

Balení musí být označeno tak, aby bylo možné identifikovat jejich obsah a datum sterilizace, stejně jako sériové číslo operátora a číslo cyklu, aby se usnadnilo jakékoli stažení a aby se usnadnila rotace zásob.

Všechny parní sterilizátory musí být analyzovány v době instalace a poté pravidelně; o všech operacích a běžné údržbě musí být vedeny záznamy. Veškerý personál musí být důkladně proškolen v bezpečném používání autoklávu6.

KONTROLY PROCESU ČIŠTĚNÍ, DEZINFEKCE A STERILIZACE

K dispozici jsou biologické a chemické indikátory, které je nutné používat pro rutinní monitorování autoklávů.

Biologické indikátory (IB) obsahují spory bakterie Geobacillus stearothermophilus.

Komerčně dostupné spory nebo lahve obsahující spory jsou strategicky umístěny v nákladu, který má být sterilizován.

Po jednom cyklu jsou IB kultivovány nebo hodnoceny z hlediska růstu a pro úspěšnou sterilizaci nesmí vykazovat žádný růst.

Chemické indikátory (CI) se používají k posouzení, zda bylo během procesu sterilizace dosaženo požadovaného času a teploty.

Příkladem CI je autoklávová páska, kterou lze připevnit na vnější stranu obalu; páska vykazuje změnu barvy, pokud byl obal vystaven teplu.

Přestože integrované obvody nejsou vhodné pro indikaci toho, zda byl produkt sterilizován, mohou pomoci odhalit poruchy zařízení a identifikovat procedurální chyby.

U procesu s vysokým vakuem závisí pronikání páry do náplně na dostatečném odvodu vzduchu.

To lze zkontrolovat dvěma způsoby:

1) S „testem těsnosti“: lze udržet vakuum nebo bude unikat vzduch? (často kolem víka).

2) Se schopností páry proniknout malým balením ručníků použitých v testu 'Bowie Dick'.

Pokud jsou výsledky těchto kontrol uspokojivé, je alternativní kontrolou „parametrické uvolnění“.

Tento systém je založen na kontrole, že sterilizační cyklus splnil všechny specifikace pro teplotu, tlak a čas, pomocí kalibrovaných nástrojů navíc k IB nebo místo nich.

Jelikož je tento přístup založen na měřitelných datech a kalibrovaných přístrojích, výsledky bývají spolehlivější a mnohem rychlejší než použití IB.

OSTATNÍ STERILIZÁTORY

Související příspěvky

Fiat Type 2: evoluce záchrany na bojišti

Na úsvitu mobilní péče: zrod motorizované ambulance

Nejnovější inovace v oboru sanitky

Nouzové situace a inovace: AI v automobilové záchraně

Pára se také používá ve dvou dalších typech sterilizátorů.

Při nízkoteplotním paroformaldehydovém procesu se pára (50-80°C) s formaldehydem v plynném stavu používá ke sterilizaci zdravotnických prostředků citlivých na teplo (i těch s omezeným průsvitem).

Zařízení se jako obvykle vyčistí a následně zpracují. Nejprve se vytvoří vakuum; pára se zavádí v po sobě jdoucích tryskách s následným odpařováním formaldehydu.

Na konci cyklu se formaldehyd odstraní a autokláv se zcela vyprázdní několika proudy páry a vysokým vakuem.

Ke sledování výkonu sterilizátoru se používají chemické a biologické indikátory.

Tento systém nelze použít s kapalinami a potenciální toxicita formaldehydu zůstává problémem.

V procesu rychlé nebo okamžité sterilizace (blesková sterilizace) se pára používá k ošetření kritických zařízení, jako jsou chirurgické nástroje náhodně kontaminované během operace nebo když nejsou k dispozici žádné jiné způsoby sterilizace.

Nikdy by se neměl používat pro implantabilní zařízení nebo ke kompenzaci nedostatku nezbytných zařízení.

Při rychlé sterilizaci porézních nebo neporézních předmětů není možné použít autokláv s gravitačním odvodem páry nebo vysokým vakuem bez zabalení nebo s použitím jediného obalu.

Není možné čekat na načtení použitých IB kvůli rychlosti, s jakou jsou zařízení znovu zpracována.

Pokud nejsou použity správné nádoby, existuje vysoké riziko rekontaminace ošetřených předmětů a také popálenin personálu během přepravy na místo použití.

MIKROVLNNÉ

Vystavení předmětů obsahujících vodu mikrovlnám vytváří teplo v důsledku tření generovaného rychlou rotací molekul vody.

Doposud se tento proces používal pouze k dezinfekci měkkých kontaktních čoček a kauterizaci močových katétrů.

Malé objemy vody však mohou být bezpečné pro potravinářské účely vystavením mikrovlnám ve skleněné nebo plastové nádobě.

Podobně lze malé skleněné nebo plastové předměty ponořit do vody a „dezinfikovat“ v mikrovlnné troubě.

STERILIZACE SUCHÝM TEPREM

Horkovzdušné pece se používají pro sterilizaci suchým teplem.

Mohou dosahovat vysokých teplot a měly by být vybaveny ventilátorem pro rovnoměrné rozložení tepla.

Předehřívání je v podstatě před zahájením sterilizačního cyklu.

Horkovzdušné pece mají jednodušší konstrukci a bezpečnější použití než autoklávy a jsou vhodné pro sterilizaci skla, kovových předmětů, prášků a bezvodých materiálů (oleje a tuky).

Sterilizace trvá dvě hodiny při 160 °C nebo jednu hodinu při 180 °C.

Guma, papír a látky by se neměly ošetřovat, aby se zabránilo riziku požáru.

ETYLENOXID

Ethylenoxid (EO) se používá ke sterilizaci předmětů, které jsou citlivé na teplo, tlak nebo vlhkost.

EO je bezbarvý, hořlavý, výbušný plyn, který je toxický pro člověka.

OE je k dispozici jako plynná směs s hydrochlorfluoruhlovodíky (IFCC) nebo existuje směs 8.5 % OE a 91.5 % oxidu uhličitého; ten druhý je levnější.

Koncentrace EO, teplota, relativní vlhkost a expozice musí být během procesu udržovány na správné úrovni, aby byla zajištěna sterilizace.

Koncentrace plynu by měla být mezi 450 a 1200 mg/l, teplota mezi 37° a 63°C, relativní vlhkost mezi 40% a 80% a expozice mezi 1 a 6 hodinami.

Uvolnění parametrických hodnot není možné, protože koncentrace plynu a relativní vlhkost nelze snadno měřit; ZS musí být součástí každého nákladu.

Doporučená IB je Bacillus atrophaeus; dávky by měly být drženy v karanténě, dokud není inkubace IB dokončena.

Hlavními nevýhodami sterilizace s OE jsou dlouhé doby cyklu a vysoká cena.

Sterilizované předměty musí být po procesu dobře vyvětrány, aby se odstranily všechny zbytky OE pro bezpečnost pacienta.

PEROXID VODÍKU PLAZMOVÝ PLYN

Plazmový plyn se generuje v uzavřené komoře ve vysokém vakuu pomocí rádiových frekvencí nebo mikrovlnné energie k excitaci molekul peroxidu vodíku a produkci nabitých částic, z nichž mnohé jsou vysoce reaktivní volné radikály.

Plazmový plyn lze použít ke sterilizaci předmětů citlivých na teplo a vlhkost, jako jsou některé plasty, elektrická/elektronická zařízení a kovové slitiny citlivé na korozi.

Jako IB se používají spory G. stearothermophilus.

Jedná se o bezpečný proces, a protože není potřeba žádné provzdušňování, sterilizované předměty jsou k dispozici pro okamžité použití nebo připravené ke skladování.

Není však vhodný pro zařízení se slepými kanálky, prášky nebo kapaliny.

Mezi další nevýhody patří vysoká cena a potřeba speciálního obalového materiálu, jako je papír nebo len, nelze použít.

Kromě toho jakákoliv přítomná kapalina nebo organický zbytek narušuje proces.

FUMIGACE

V poslední době se zvýšil zájem o použití fumigantů v životním prostředí k boji proti patogenům ohrožujícím zdraví, jako jsou S. aureus a C. difficile rezistentní na meticilin.

K dispozici je celá řada zařízení, která se liší cenou, použitým procesem a typem testování v terénu, které podstupují.

Běžným postupem je odpařování roztoku peroxidu vodíku v utěsněné místnosti, jako je pokoj pro pacienty, k dekontaminaci povrchů.

Žádné následné provzdušňování není nutné, protože peroxid vodíku se snadno rozkládá na kyslík a vodu.

Proužky výtrusů (IB) jsou strategicky umístěny po celé místnosti a později se shromažďují, aby se mohla sledovat účinnost procesu.

Mezi nevýhody patří nekompatibilita s celulózovými materiály a potenciální koroze elektronických zařízení.

Oxid chloričitý generovaný na místě může být uvolněn jako plyn k dekontaminaci místnosti.

Místnosti musí být nejen utěsněny, ale také zatemněny, aby sluneční záření neurychlovalo degradaci plynu.

Stejně jako peroxid vodíku se i oxid chloričitý přirozeně rozkládá na neškodné vedlejší produkty.

Ozón může dekontaminovat povrchy v uzavřených prostorách; je vysoce nestabilní a potenciálně škodlivý pro různé materiály běžně se vyskytující ve zdravotnických zařízeních.

Komerčně dostupný je však sterilizátor zdravotnických prostředků na bázi ozonu.

Plyn je generován z kyslíku a na konci cyklu jej katalýzou přeměňuje na kyslík a vodu.

Pro tento nástroj je požadována široká materiálová kompatibilita a schopnost manipulovat s tenkými kanálky.

ULTRAFIALOVÁ RADIACE

Nedávné pokroky v technologii ultrafialového (UV) světla činí mikrobicidní potenciál UV záření krátkého dosahu užitečným pro různá použití.

UV lampy jsou široce používány pro dezinfekci vody a odpadních vod.

Zařízení na bázi UV záření se prodávají pro dezinfekci vzduchu v nemocnicích a na klinikách, aby se snížilo šíření vzdušných patogenů.

Tato zařízení jsou také prodávána pro dezinfekci povrchů nemocničního prostředí.

UV záření nepřidává do upravované vody a vzduchu žádné chemikálie, s výjimkou generování nízkých hladin ozónu.

Nemůže však proniknout nečistotami a předměty vyžadují přímé vystavení záření.

Takové lampy vyžadují běžné čištění a pravidelnou výměnu; mohou vyzařovat viditelné světlo i po snížení UV záření.

Reference:

1. Asociace pro rozvoj lékařské přístrojové techniky. Chemická sterilizace a dezinfekce vysoké úrovně ve zdravotnických zařízeních. ANSI/ AAMI ST58:2013.

2. Asociace pro rozvoj lékařské přístrojové techniky. Komplexní průvodce parní sterilizací a zajištěním sterility ve zdravotnických zařízeních. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.

3. Směrnice pro kontrolu environmentálních infekcí ve zdravotnických zařízeních; Doporučení CDC a Poradního výboru pro kontrolu infekcí ve zdravotnictví (HICPAC). MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf

4. Agentura pro regulaci léčiv a zdravotnických produktů, Ministerstvo zdravotnictví Spojeného království: Dekontaminace a kontrola infekcí; Pokyny pro dekontaminaci a kontrolu infekcí, včetně chirurgických nástrojů, stomatologického vybavení, endoskopů a stolních parních sterilizátorů, prosinec 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438

5. Ministerstvo zdravotnictví a dlouhodobé péče Ontaria. Provinční poradní výbor pro infekční choroby (PIDAC). Nejlepší postupy pro čištění, dezinfekci a sterilizaci ve všech zařízeních zdravotní péče, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.

6. Rutala WA, Weber DJ. Pokyny pro dezinfekci a sterilizaci ve zdravotnických zařízeních, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Desinfection_Nov_2008.pdf

7. Spaulding EH. Chemická dezinfekce lékařských a chirurgických materiálů. Desinfection, Sterilization, & Preservation, 3rd Edition, Block S (Ed), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.

8. mezinárodní norma ISO 15883-3; 2010, Myčky-dezinfektory. Specifikuje zvláštní požadavky na mycí a dezinfekční myčky (WD), které jsou určeny k použití pro vyprazdňování, proplachování, čištění a tepelnou dezinfekci nádob používaných k ukládání lidského odpadu k likvidaci v jednom provozním cyklu. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078

9. Sattar SA, Maillard JY. Klíčová role utírání při dekontaminaci povrchů s vysokým dotykem životního prostředí: Přehled současného stavu a směrů do budoucna. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.

10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB a kol. Role nemocničních povrchů při přenosu vznikajících patogenů spojených se zdravotní péčí: norovirus, Clostridium difficile a druhy Acinetobacter. Am J Infect Control 2010; 38 (5 Suppl 1): S25-33.

11. Rutala WA, Weber DJ. Směrnice pro dezinfekci a sterilizaci lékařských nástrojů kontaminovaných priony. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.

12. Muscarella LF. Riziko přenosu karbapenem-rezistentních Enterobacteriaceae a souvisejících „superbakterií“ během gastrointestinální endoskopie. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.

13. Snyder, OP. Kalibrace teploměrů ve vroucí vodě: Tabulky bodu varu / atmosférického tlaku / nadmořské výšky. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Ultimátní přístup 17. srpna 2015]

14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S, et al. Srovnávací studie plynného ethylenoxidu, plynného plazmatu peroxidu vodíku a nízkoteplotní parní sterilizace formaldehydem. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.

15. Seavey R. Dezinfekce na vysoké úrovni, sterilizace a antisepse: aktuální problémy při regeneraci lékařských a chirurgických nástrojů. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.

16. Rutala WA, Weber DJ. Nový vývoj v oblasti přepracování semikritických položek. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.

17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA, et al. Prevence a kontrola multirezistentních gramnegativních bakterií: doporučení společné pracovní skupiny. J Hosp Infect 2016; 92, SI-S1.

18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ a kol. Pokyny ESCMID pro řízení opatření kontroly infekce ke snížení přenosu multirezistentních gramnegativních bakterií u hospitalizovaných pacientů. Clin Microbiol Infect 2014; Vol 20 (Suppl s1), s. 1–55.

Také:

1. Fraise AP, Maillard YJ a Sattar SA. Zásady a praxe dezinfekce, konzervace a sterilizace. 2013, 5. vydání, Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, Anglie; ISBN-13: 978- 1444333251.

2. McDonnell G. Antisepse, dezinfekce a sterilizace: typy, působení a rezistence; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. K dispozici elektronicky prostřednictvím knih Google http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+desinfect ion,+and+sterilization&hl=cs&ei=Z2wvTeCBAYGCi&Qabl =book_result&ct=result&res num=8&ved=8CDEQ7AEwAA#v=onepage&q&f=false

3. McDonnell G. & Sheard D. Praktický průvodce dekontaminací ve zdravotnictví. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.

4. Quinn, MM a kol. Čištění a dezinfekce povrchů životního prostředí ve zdravotnictví: Směrem k integrovanému rámci pro prevenci infekcí a nemocí z povolání? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.

5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Charakterizace inaktivace spór Bacillus subtilis v procesech nízkotlaké a nízkoteplotní plynové plazmové sterilizace. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.

6. Sattar SA. Sliby a úskalí nedávných pokroků v chemických prostředcích prevence šíření nozokomiálních infekcí povrchy životního prostředí. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.

7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Bakteriální kontaminace stetoskopů používaných zdravotnickými pracovníky: důsledky pro veřejné zdraví. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.

8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, a kol. Opatření pro kontrolu infekce k omezení šíření Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Suppl 5):2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs na duodenoskopech: výzva čištění a dezinfekce opakovaně použitelných zařízení. J Clin Microbiol 2015: 53: 3118-3125.