Limpeza, desinfecção e esterilização de compartimentos e ambientes de saúde

By Cristiano antonino On 25 Agosto , 2022

Limpeza, desinfecção e esterilização são os pilares da prevenção e controle de infecções em instalações e ambientes de saúde

Apesar dessa evidência, há muitas situações em que esses procedimentos são inexistentes ou mesmo ausentes, e em que a equipe é mal ou insuficientemente treinada.

Limpeza, desinfecção e esterilização, alguns conceitos básicos:

LIMPEZA E PRÉ-LIMPEZA

Enquanto 'limpeza' significa remover sujeira visível, o termo 'pré-limpeza' refere-se à remoção de fluidos corporais e outros contaminantes antes da desinfecção ou esterilização.

A pré-limpeza adequada pode reduzir substancialmente a carga microbiana de patógenos, enquanto a remoção de resíduos orgânicos e inorgânicos pode facilitar o processo de recondicionamento.

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A limpeza meticulosa é essencial para uma desinfecção ou esterilização eficaz

A limpeza e a pré-limpeza eficazes dos dispositivos geralmente requerem produtos químicos, combinados com ação mecânica e calor.

Pode ser realizado manualmente e/ou com máquinas automatizadas.

A pré-limpeza manual requer o uso de detergentes ou enzimas combinados com uma atividade mecânica realizada pelo operador (esfregar, escovar, lavar) para remover a sujeira do exterior e do interior dos dispositivos a serem reprocessados.

Após a limpeza ou desinfecção, os dispositivos devem ser bem enxaguados para remover quaisquer resíduos químicos e depois secos conforme recomendado pelo fabricante.

Todos os dispositivos reprocessados devem ser armazenados adequadamente para evitar danos ou recontaminação.

LIMPEZA, DESINFECÇÃO E ESTERILIZAÇÃO: A CLASSIFICAÇÃO DE SPAULDING

Em 1968, Spaulding classificou os dispositivos médicos/cirúrgicos como críticos, semicríticos e não críticos com base em seu potencial de disseminação de infecções.

Dispositivos críticos normalmente entram no tecido estéril, no sistema vascular ou nos sistemas pelos quais o sangue flui; exemplos são instrumentos cirúrgicos e cateteres vasculares.

Esses dispositivos devem ser pré-limpos e esterilizados de forma adequada e segura antes do uso.

Dispositivos semicríticos entram em contato com mucosas intactas ou pele não íntegra; exemplos são endoscópios de fibra óptica, sondas vaginais e respiração assistida equipamento.

Esses itens exigem pré-limpeza adequada e, pelo menos, desinfecção de alto nível antes do uso.

Dispositivos não críticos (como manguitos de pressão arterial, estetoscópios) que entram em contato com a pele intacta têm baixo risco de propagação de infecções, exceto pela transferência de patógenos para as mãos dos profissionais de saúde.

A limpeza e limpeza periódica desses dispositivos com detergente neutro ou solução a 70% de água e etanol costuma ser suficiente (comadres reutilizáveis, embora considerados dispositivos não críticos, requerem limpeza, lavagem e desinfecção mais rigorosas, principalmente quando a contaminação com, por ex., suspeita-se de enterococos resistentes à vancomicina ou Clostridium difficile).

A maioria das superfícies ambientais no quarto do paciente e nas salas de espera deve ser considerada não crítica e não requer desinfecção de rotina.

No entanto, superfícies com alta frequência de contato, principalmente aquelas próximas ao paciente, requerem descontaminação regular para evitar a transferência de patógenos para as mãos da equipe de atendimento.

Não há indicação específica em diretrizes recentes se, quando, como e com que frequência tais superfícies devem ser descontaminadas. 9,10.

Embora o sistema de classificação de Spaulding 7 permaneça válido, ele precisa ser adaptado às necessidades atuais.

Os príons com sua resistência incomum a agentes físicos e químicos 11 e o surgimento de infecções relacionadas ao cuidado causadas por esporos de Clostridium difficile 10 ou Enterobacteriaceae 12 resistentes a carbapenêmicos estão impulsionando um reexame do reprocessamento de dispositivos médicos.

Dispositivos contaminados com príons requerem protocolos de esterilização muito além daqueles normalmente utilizados 11.

Alguns desinfetantes (por exemplo, aldeídos) geralmente usados para reprocessar endoscópios gastrointestinais precisam de tempos de contato prolongados para matar os esporos de C. difficile.

Dispositivos sensíveis ao calor, como endoscópios de fibra óptica flexíveis, são cada vez mais usados para operações nas quais a integridade da membrana mucosa é deliberadamente violada, cruzando assim a linha entre dispositivos 'críticos' e 'semi-críticos'.

O REPROCESSAMENTO DE DISPOSITIVOS MÉDICOS: DESINFECÇÃO

“Desinfecção” significa reduzir o número de patógenos em uma superfície ou objeto inanimado usando calor, produtos químicos ou ambos.

A maioria dos procedimentos de desinfecção tem pouca atividade contra esporos bacterianos; qualquer redução na quantidade de esporos é conseguida principalmente por ação mecânica e lavagem.

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LIMPEZA, DESINFECÇÃO E ESTERILIZAÇÃO: PASTEURIZAÇÃO E EBULIÇÃO

Dispositivos semicríticos, como os usados para terapia respiratória ou equipamentos de anestesia, podem ser pasteurizados por aquecimento em água.

Todas as suas partes devem permanecer totalmente imersas por pelo menos 30 minutos a 65-77°C.

Em locais de altitudes mais elevadas, é necessário mais tempo para atingir o ponto de ebulição da água, pois este aumenta à medida que se afasta do nível do mar. 13

A imersão de dispositivos resistentes ao calor em água fervente por cerca de 10 minutos pode reduzir substancialmente a carga microbiana de patógenos, mas nunca deve ser considerado como 'esterilização'.

A pasteurização e a fervura são, portanto, métodos de baixa tecnologia e livres de produtos químicos (desde que a água seja pura); uma vez tratados, os itens devem ser manuseados com cuidado para transporte e armazenamento seguros.

LIMPEZA, DESINFECÇÃO E ESTERILIZAÇÃO: DESINFECÇÃO QUÍMICA

Desinfetantes químicos comuns incluem álcoois, cloro e compostos de cloro, glutaraldeído, orto-ftalaldeído, peróxido de hidrogênio, ácido peracético, fenóis e compostos de amônio quaternário (CAQ).

Esses produtos químicos podem ser usados sozinhos ou em combinação.

Devem ser utilizados de acordo com as instruções do fabricante na etiqueta do produto e somente em superfícies com as quais sejam compatíveis.

Idealmente, os produtos comerciais devem passar por testes padrão para apoiar o que está declarado no rótulo antes de serem vendidos e usados em instalações de saúde.

No entanto, os requisitos para o registro de produtos e o que está declarado no rótulo variam muito de região para região.

Os desinfetantes químicos variam muito em termos dos efeitos nocivos que podem causar aos seres humanos e ao meio ambiente; eles devem ser usados com cuidado e somente quando não houver alternativas viáveis disponíveis.

Os desinfetantes são divididos em três categorias de acordo com sua atividade microbicida: Desinfetantes de alto nível

Os desinfetantes de alto nível (DAL) são ativos contra bactérias na forma vegetativa, vírus (incluindo vírus não encobertos), fungos e micobactérias. Com tempos de contato prolongados, eles também podem ter atividade contra esporos bacterianos.

DALs são usados para desinfetar dispositivos sensíveis ao calor e dispositivos semicríticos, como endoscópios de fibra óptica flexíveis.

Aldeídos (glutaraldeído e ortoftaldeído) e oxidantes (por exemplo, peróxido de hidrogênio e ácido peracético) são DALs.

Os aldeídos não são corrosivos e são seguros para uso na maioria dos dispositivos.

No entanto, podem promover a adesão de materiais orgânicos; portanto, é particularmente importante remover qualquer microrganismo aderido antes da desinfecção.

Se não forem formulados e usados adequadamente, os oxidantes podem ser corrosivos.

No entanto, eles podem ser de ação mais rápida, não fixadores e mais seguros para o meio ambiente do que os aldeídos.

Dependendo da temperatura, os DALs geralmente requerem de 10 a 45 minutos de tempo de contato.

Após a desinfecção, os dispositivos requerem lavagem completa com água estéril ou microfiltrada para remover quaisquer produtos químicos residuais; os dispositivos devem então ser secos passando uma solução à base de álcool ou soprando ar limpo e filtrado pelos canais do dispositivo antes do armazenamento.

Desinfetantes de nível médio

Um desinfetante (por exemplo, etanol) ativo contra bactérias na forma vegetativa, micobactérias, micetos e a maioria dos vírus.

Mesmo após exposição prolongada, pode não ser capaz de matar os esporos.

Desinfetantes de baixo nível

Desinfetantes de baixo nível (por exemplo, compostos de amônio quaternário) são ativos contra bactérias na forma vegetativa (exceto micobactérias), alguns micetos e apenas vírus revestidos.

Em muitos casos, a lavagem com água e sabão não antisséptico seria suficiente em vez de tais desinfetantes.

ESTERILIZAÇÃO

A esterilização é qualquer processo que possa inativar todos os micro-organismos encontrados em um objeto; os procedimentos padrão de esterilização podem exigir variações na atividade dos príons.11

O calor é o meio de esterilização mais confiável; a maioria dos instrumentos cirúrgicos são resistentes ao calor.

O calor úmido, usado em uma autoclave como vapor sob pressão, mata os microrganismos desnaturando suas proteínas.

O calor seco usado em um forno mata por oxidação, através de um processo muito mais lento.

O calor seco é usado para esterilizar materiais sensíveis à umidade (pós anidros) ou itens que o vapor não pode penetrar (óleos e ceras).

Os dispositivos sensíveis ao calor requerem esterilização a baixa temperatura; óxido de etileno (EO), gás-plasma de peróxido de hidrogênio e vapor de formaldeído são frequentemente usados para essa finalidade.14

Os dispositivos esterilizados devem ser armazenados em local limpo, livre de poeira e seco e a integridade da embalagem deve ser garantida.

As embalagens contendo suprimentos estéreis devem ser verificadas antes do uso quanto à integridade da barreira e ausência de umidade.

Se a embalagem estiver comprometida, os aparelhos não devem ser utilizados, mas limpos, embalados e novamente esterilizados.

Esterilização a vapor O vapor é o meio de esterilização mais confiável.

Não é tóxico (quando gerado a partir de água livre de produtos químicos voláteis), possui atividade microbicida de amplo espectro e boa capacidade de penetração, além de ser barato e de fácil controle.15,16

A esterilização requer o contato direto entre o objeto a ser esterilizado e o vapor, a uma temperatura e pressão exigidas por um determinado tempo.

Autoclaves são câmaras especialmente projetadas onde o vapor sob pressão gera altas temperaturas.

Eles são baseados no mesmo princípio da panela de pressão.

Existem dois tipos principais de esterilizador a vapor:

– Em autoclaves com remoção por gravidade (para baixo), o vapor é introduzido na parte superior da câmara para remover a mistura ar-vapor mais fria e mais densa do fundo da câmara. A válvula de escape fecha quando todo o ar é removido, permitindo que a pressão e a temperatura aumentem. Essas autoclaves são usadas para esterilizar líquidos e objetos em recintos que o vapor é capaz de penetrar. A fase de esterilização geralmente dura cerca de 15 minutos a 121°C a 103.4 quilopascals (15 lbs/polegada quadrada).

– Nas autoclaves de alto vácuo, primeiro é criado um vácuo na câmara de esterilização e depois é introduzido o vapor, permitindo uma entrada de vapor mais rápida e eficiente em toda a carga. A pressão e a temperatura que aumentam rapidamente permitem tempos de processo de três minutos a 134°C a aproximadamente 206.8 quilopascals (30 libras/polegada quadrada).

Os instrumentos a serem autoclavados devem ser envoltos em materiais que permitam a penetração do vapor e mantenham o dispositivo tratado estéril durante o armazenamento.

A sobrecarga da autoclave deve ser evitada para permitir o livre acesso ao vapor em toda a carga.

As embalagens devem ser marcadas para identificar seu conteúdo e a data de esterilização, bem como o número de série do operador e o número do ciclo para facilitar qualquer recolhimento e rotação de suprimentos.

Todos os esterilizadores a vapor devem ser analisados no momento da instalação e depois regularmente; devem ser mantidos registros de todas as operações e manutenção de rotina. Todo o pessoal deve ser completamente treinado no uso seguro da autoclave6.

CONTROLES NOS PROCESSOS DE LIMPEZA, DESINFECÇÃO E ESTERILIZAÇÃO

Indicadores biológicos e químicos estão disponíveis e devem ser usados para monitoramento de rotina de autoclaves.

Os indicadores biológicos (IB) contêm esporos da bactéria Geobacillus stearothermophilus.

Os esporos ou frascos contendo esporos disponíveis comercialmente são colocados estrategicamente na carga a ser esterilizada.

Após um ciclo, os IBs são cultivados ou avaliados quanto ao crescimento e não devem apresentar crescimento para reivindicar a esterilização bem-sucedida.

Os indicadores químicos (CIs) são usados para avaliar se o tempo e a temperatura necessários foram alcançados durante o processo de esterilização.

Um exemplo de IC é a fita autoclave, que pode ser afixada na parte externa da embalagem; a fita mostra uma mudança de cor se a embalagem tiver sido exposta ao calor.

Embora os CIs não sejam adequados para indicar se um produto foi esterilizado, eles podem ajudar a detectar mau funcionamento do equipamento e identificar erros de procedimento.

Para o processo de alto vácuo, a penetração do vapor na carga depende da remoção adequada do ar.

Isso pode ser verificado de duas maneiras:

1) Com um 'teste de vazamento': o vácuo pode ser mantido ou o ar escapará? (muitas vezes ao redor da tampa).

2) Com a capacidade do vapor de penetrar em um pequeno pacote de toalhas usadas no teste 'Bowie Dick'.

Se os resultados dessas verificações forem satisfatórios, uma verificação alternativa é a 'liberação paramétrica'.

Este sistema baseia-se na verificação de que o ciclo de esterilização atendeu a todas as especificações de temperatura, pressão e tempo, utilizando instrumentos calibrados em adição ou em substituição aos IBs.

Como essa abordagem é baseada em dados mensuráveis e instrumentos calibrados, os resultados tendem a ser mais confiáveis e muito mais rápidos do que usando IBs.

OUTROS ESTERILIZADORES

MICROONDAS

A exposição de objetos contendo água a micro-ondas cria calor devido ao atrito gerado pela rápida rotação das moléculas de água.

Até agora, esse processo foi usado apenas para desinfetar lentes de contato gelatinosas e cauterizar cateteres urinários.

No entanto, pequenos volumes de água podem se tornar seguros para fins alimentícios pela exposição a micro-ondas em um recipiente de vidro ou plástico.

Da mesma forma, pequenos objetos de vidro ou plástico podem ser imersos em água e 'desinfetados' em um forno de micro-ondas.

ESTERILIZAÇÃO POR CALOR SECO

Os fornos de ar quente são usados para esterilização por calor seco.

Eles podem atingir altas temperaturas e devem ser equipados com um ventilador para uma distribuição uniforme do calor.

O pré-aquecimento é essencialmente antes de iniciar o ciclo de esterilização.

Os fornos de ar quente são mais simples em design e mais seguros de usar do que as autoclaves e são adequados para esterilizar vidraria, objetos metálicos, pós e materiais anidros (óleo e graxa).

A esterilização leva duas horas a 160°C, ou uma hora a 180°C.

Borracha, papel e tecido não devem ser tratados para evitar o risco de incêndio.

ÓXIDO DE ETILENO

O óxido de etileno (EO) é usado para esterilizar objetos sensíveis ao calor, pressão ou umidade.

O OE é um gás incolor, inflamável e explosivo que é tóxico para os seres humanos.

O OE está disponível como uma mistura gasosa com hidroclorofluorcarbonos (IFCC) ou existe uma mistura de 8.5% de OE e 91.5% de dióxido de carbono; este último é mais barato.

A concentração de OE, temperatura, umidade relativa e exposição devem ser mantidas no nível certo durante o processo para garantir a esterilização.

A concentração do gás deve estar entre 450 e 1200 mg/L, temperatura entre 37° e 63°C, umidade relativa entre 40% e 80% e exposição entre 1 e 6 horas.

A liberação de valores paramétricos não é possível porque a concentração do gás e a umidade relativa não podem ser facilmente medidas; o IB deve ser incluído em cada carga.

O IB recomendado é Bacillus atrophaeus; as cargas devem ser mantidas em quarentena até que a incubação do IB seja concluída.

As principais desvantagens da esterilização com OE são os longos tempos de ciclo e o alto custo.

Os objetos esterilizados devem ser bem ventilados após o processo para remover todo OE residual para segurança do paciente.

GÁS PLASMA DE PERÓXIDO DE HIDROGÊNIO

O gás de plasma é gerado em uma câmara fechada sob alto vácuo usando radiofrequência ou energia de micro-ondas para excitar moléculas de gás peróxido de hidrogênio e produzir partículas carregadas, muitas das quais são radicais livres altamente reativos.

O gás plasma pode ser usado para esterilizar objetos sensíveis ao calor e à umidade, como certos plásticos, dispositivos elétricos/eletrônicos e ligas metálicas sensíveis à corrosão.

Esporos de G. stearothermophilus são usados como IB.

Este é um processo seguro e, como não há necessidade de aeração, os itens esterilizados estão disponíveis para uso imediato ou prontos para armazenamento.

No entanto, não é adequado para dispositivos com canais cegos, pós ou líquidos.

Outras desvantagens incluem o alto custo e a necessidade de material de embalagem especial, pois papel ou linho não podem ser usados.

Além disso, qualquer resíduo líquido ou orgânico presente interfere no processo.

FUMIGAÇÃO

Recentemente, tem aumentado o interesse no uso de fumigantes no ambiente para combater patógenos de interesse para a saúde, como S. aureus e C. difficile resistentes à meticilina.

Uma variedade de dispositivos está disponível, variando em custo, processo usado e tipo de teste de campo a que são submetidos.

Um procedimento comum é vaporizar uma solução de peróxido de hidrogênio em uma sala selada, como um quarto de paciente, para descontaminar as superfícies.

Nenhuma aeração pós-tratamento é necessária porque o peróxido de hidrogênio se degrada facilmente em oxigênio e água.

Tiras de esporos (IB) são colocadas estrategicamente em toda a sala e recuperadas posteriormente para monitorar a eficácia do processo.

As desvantagens incluem incompatibilidade com materiais celulósicos e potencial corrosão de dispositivos eletrônicos.

O dióxido de cloro gerado no local pode ser liberado como gás para descontaminar a sala.

As salas não devem apenas ser vedadas, mas também escurecidas para evitar que a luz solar acelere a degradação do gás.

Como o peróxido de hidrogênio, o dióxido de cloro se degrada naturalmente em subprodutos inofensivos.

O ozônio pode descontaminar superfícies em espaços fechados; é altamente instável e potencialmente prejudicial a uma variedade de materiais normalmente encontrados em estabelecimentos de saúde.

No entanto, um esterilizador de dispositivos médicos à base de ozônio está disponível comercialmente.

O gás é gerado a partir do oxigênio e no final do ciclo o converte em oxigênio e água por catálise.

A ampla compatibilidade de materiais e a capacidade de lidar com dispositivos de canal fino são reivindicadas para este instrumento.

RADIAÇÃO ULTRAVIOLETA

Avanços recentes na tecnologia de luz ultravioleta (UV) tornam o potencial microbicida da radiação UV de curto alcance útil para uma variedade de usos.

As lâmpadas UV são amplamente utilizadas para a desinfecção de água e águas residuais.

Dispositivos baseados em UV são comercializados para desinfecção do ar em hospitais e clínicas para reduzir a propagação de patógenos transportados pelo ar.

Esses dispositivos também são comercializados para a desinfecção de superfícies ambientais hospitalares.

A radiação UV não adiciona nenhum produto químico à água e ao ar tratados, com exceção de gerar baixos níveis de ozônio.

No entanto, não pode penetrar na sujeira e os objetos requerem exposição direta à radiação.

Essas lâmpadas requerem limpeza normal e substituição periódica; eles podem emitir luz visível mesmo após a diminuição da radiação UV.

Referências:

1. Associação para o Avanço da Instrumentação Médica. Esterilização química e desinfecção de alto nível em estabelecimentos de saúde. ANSI/AAMI ST58:2013.

2. Associação para o Avanço da Instrumentação Médica. Guia abrangente para esterilização a vapor e garantia de esterilidade em estabelecimentos de saúde. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.

3. Diretrizes para Controle de Infecção Ambiental em Estabelecimentos de Saúde; Recomendações do CDC e do Comitê Consultivo de Práticas de Controle de Infecção em Saúde (HICPAC). MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf

4. Agência Reguladora de Medicamentos e Produtos de Saúde, Departamento de Saúde do Reino Unido: Descontaminação e controle de infecção; Orientação sobre descontaminação e controle de infecção, incluindo instrumentos cirúrgicos, equipamentos odontológicos, endoscópios e esterilizadores a vapor de bancada, dezembro de 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438

5. Ministério da Saúde e Cuidados de Longo Prazo de Ontário. Comitê Consultivo Provincial de Doenças Infecciosas (PIDAC). Melhores práticas para limpeza, desinfecção e esterilização em todos os ambientes de saúde, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.

6. Rutala WA, Weber DJ. Diretriz para Desinfecção e Esterilização em Instalações de Saúde, 2008. Centros para Controle e Prevenção de Doenças, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Desinfecção_Nov_2008.pdf

7. Espaldando EH. Desinfecção química de materiais médicos e cirúrgicos. Desinfecção, Esterilização e Preservação, 3ª Edição, Bloco S (Ed), 1968, Lea & Febiger, Filadélfia, PA.

8. Norma Internacional ISO 15883-3; 2010, Lavadoras-desinfetadoras. Especifica requisitos específicos para lavadoras-desinfetadoras (WD) destinadas a serem usadas para esvaziamento, lavagem, limpeza e desinfecção térmica de recipientes usados para armazenar dejetos humanos para descarte por um ciclo operacional. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078

9. Sattar SA, Maillard JY. O papel crucial da limpeza na descontaminação de superfícies ambientais de alto toque: Revisão do status atual e direções para o futuro. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.

10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB, et al. Papel das superfícies hospitalares na transmissão de patógenos emergentes associados aos cuidados de saúde: norovírus, Clostridium difficile e espécies de Acinetobacter. Am J Infect Control 2010; 38 (5 Supl 1):S25-33.

11. Rutala WA, Weber DJ. Diretriz para desinfecção e esterilização de instrumentos médicos contaminados por príons. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.

12. Muscarella LF. Risco de transmissão de Enterobacteriaceae resistentes a carbapenem e “superbactérias” relacionadas durante a endoscopia gastrointestinal. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.

13. Snyder, OP. Calibração de termômetros em água fervente: Ponto de Ebulição / Pressão Atmosférica / Tabelas de Altitude. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Último acesso em 17 de agosto de 2015]

14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S, et al. Um estudo comparativo de gás óxido de etileno, plasma de gás peróxido de hidrogênio e esterilização de formaldeído a vapor de baixa temperatura. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.

15. Seavey R. Desinfecção de alto nível, esterilização e antissepsia: questões atuais no reprocessamento de instrumentos médicos e cirúrgicos. Am J Infect Control 2013;41(5 Supl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.

16. Rutala WA, Weber DJ. Novidades no reprocessamento de itens semicríticos. Am J Infect Control 2013;41 (5 Supl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.

17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA, et al. Prevenção e controle de bactérias Gramnegativas multirresistentes: recomendações de um Grupo de Trabalho Conjunto. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.

18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ, et al. Diretrizes da ESCMID para o gerenciamento das medidas de controle de infecção para reduzir a transmissão de bactérias Gram-negativas multirresistentes em pacientes hospitalizados. Clin Microbiol Infect 2014; Vol 20 (Suppl s1), pp 1–55.

Também:

1. Fraise AP, Maillard YJ e Sattar SA. Princípios e Práticas de Desinfecção, Conservação e Esterilização. 2013, 5ª ed., Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, Inglaterra; ISBN-13: 978-1444333251.

2. McDonnell G. Antissepsia, desinfecção e esterilização: Tipos, Ação e Resistência; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. Disponível eletronicamente através do Google livros http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+disinfect ion,+and+sterilization&hl=en&ei=Z2wvTeCBAYGC8gbls8y7CQ&sa=X&oi =book_result&ct=result&res num=1&ved=0CDEQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false

3. McDonnell G. & Sheard D. Um guia prático para descontaminação na área da saúde. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.

4. Quinn, MM et ai. Limpeza e desinfecção de superfícies ambientais nos cuidados de saúde: rumo a uma estrutura integrada para prevenção de infecções e doenças ocupacionais? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.

5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Caracterização da inativação de esporos de Bacillus subtilis em processos de esterilização de plasma de gás de baixa pressão e baixa temperatura. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.

6. Satar SA. Promessas e armadilhas dos recentes avanços em meios químicos de prevenção da propagação de infecções nosocomiais por superfícies ambientais. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.

7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Contaminação bacteriana de estetoscópios usados por profissionais de saúde: implicações para a saúde pública. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.

8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, et al. Medidas de controle de infecção para limitar a disseminação de Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Suplemento 5):2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs em Duodenoscópios: o desafio da limpeza e desinfecção de dispositivos reutilizáveis. J Clin Microbiol 2015: 53:3118-3125.

Fonte:

IFIC

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