Очистка, дезинфекция и стерилизация медицинских отделений и помещений
Уборка, дезинфекция и стерилизация являются краеугольными камнями профилактики инфекций и борьбы с ними в медицинских учреждениях и окружающей среде.
Несмотря на эти данные, во многих случаях эти процедуры отсутствуют или отсутствуют, а персонал плохо или недостаточно обучен.
Очистка, дезинфекция и стерилизация, некоторые основные понятия:
ОЧИСТКА И ПРЕДВАРИТЕЛЬНАЯ ОЧИСТКА
В то время как «очистка» означает удаление видимой грязи, термин «предварительная очистка» относится к удалению биологических жидкостей и других загрязнений перед дезинфекцией или стерилизацией.
Адекватная предварительная очистка может существенно снизить микробную нагрузку патогенов, а удаление органических и неорганических остатков может облегчить процесс восстановления.
Тщательная очистка необходима для эффективной дезинфекции или стерилизации.
Для эффективной очистки и предварительной очистки устройств часто требуются химические вещества в сочетании с механическим воздействием и нагреванием.
Это может быть выполнено вручную и/или с помощью автоматизированных машин.
Ручная предварительная очистка требует использования моющих средств или ферментов в сочетании с механическими действиями оператора (протирание, чистка щеткой, промывка) для удаления грязи снаружи и внутри перерабатываемых устройств.
После очистки или дезинфекции устройства необходимо тщательно промыть, чтобы удалить остатки химических веществ, а затем высушить в соответствии с рекомендациями производителя.
Все переработанные устройства должны храниться надлежащим образом, чтобы избежать повреждения или повторного загрязнения.
ОЧИСТКА, ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ: КЛАССИФИКАЦИЯ СПАУЛДИНГА
В 1968 году Сполдинг классифицировал медицинские/хирургические устройства как критические, полукритические и некритические в зависимости от их способности распространять инфекцию.
Критические устройства обычно попадают в стерильную ткань, сосудистую систему или системы, по которым течет кровь; примерами являются хирургические инструменты и сосудистые катетеры.
Эти устройства должны быть должным образом и безопасно предварительно очищены и стерилизованы перед использованием.
Полукритические устройства контактируют с неповрежденными слизистыми оболочками или неповрежденной кожей; примерами являются волоконно-оптические эндоскопы, вагинальные датчики и вспомогательное дыхание. Оборудование.
Эти предметы требуют надлежащей предварительной очистки и, как минимум, дезинфекции высокого уровня перед использованием.
Некритические устройства (такие как манжеты для измерения артериального давления, стетоскопы), соприкасающиеся с неповрежденной кожей, имеют низкий риск распространения инфекции, за исключением передачи возбудителей на руки медицинского персонала.
Обычно бывает достаточно периодической очистки и протирки этих устройств нейтральным моющим средством или 70%-ным раствором воды и этанола (многоразовые подкладные суда, хотя и считаются некритичными устройствами, но требуют более тщательной очистки, мытья и дезинфекции, особенно при загрязнении, для например, подозреваются устойчивые к ванкомицину энтерококки или Clostridium difficile).
Большинство окружающих поверхностей в палатах пациентов и залах ожидания следует считать некритическими и не требующими регулярной дезинфекции.
Однако поверхности с высокой частотой контакта, особенно находящиеся в непосредственной близости от пациента, требуют регулярной дезактивации, чтобы избежать попадания возбудителей в руки обслуживающего персонала.
В последних руководствах нет конкретных указаний о том, следует ли, когда, как и как часто проводить обеззараживание таких поверхностей. 9,10.
Хотя система классификации Spaulding 7 остается в силе, ее необходимо адаптировать к текущим потребностям.
Прионы с их необычной устойчивостью к физическим и химическим агентам 11 и появление связанных с уходом инфекций, вызванных спорами Clostridium difficile 10 или резистентными к карбапенемии энтеробактериями 12, заставляют пересматривать переработку медицинских устройств.
Устройства, загрязненные прионами, требуют протоколов стерилизации, далеко выходящих за рамки обычно используемых 11.
Некоторым дезинфицирующим средствам (например, альдегидам), обычно используемым для обработки желудочно-кишечных эндоскопов, требуется длительное время контакта для уничтожения спор C. difficile.
Термочувствительные устройства, такие как гибкие волоконно-оптические эндоскопы, все чаще используются для операций, при которых намеренно нарушается целостность слизистой оболочки, тем самым пересекая грань между «критическими» и «полукритическими» устройствами.
ПЕРЕРАБОТКА МЕДИЦИНСКИХ ИЗДЕЛИЙ: ДЕЗИНФЕКЦИЯ
«Дезинфекция» означает уменьшение количества патогенов на неодушевленной поверхности или объекте с помощью тепла, химических веществ или того и другого.
Большинство процедур дезинфекции малоэффективны против бактериальных спор; любое уменьшение количества спор в основном достигается за счет механического воздействия и промывания.
НОМЕР ОДИН В СКОРОЙ ПОМОЩИ В ИТАЛИИ: ПОСЕТИТЕ СТЕНД ORION НА EMERGENCY EXPO
ОЧИСТКА, ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ПАСТЕРИЗАЦИЯ И КИПЯЧЕНИЕ
Полукритические устройства, например, используемые для респираторной терапии или оборудования для анестезии, можно пастеризовать путем нагревания в воде.
Все их части должны оставаться полностью погруженными не менее чем на 30 минут при температуре 65-77°C.
В местах на больших высотах требуется больше времени для достижения точки кипения воды, поскольку она увеличивается по мере удаления от уровня моря. 13
Замачивание термостойких изделий в кипящей воде примерно на 10 минут может существенно снизить микробную нагрузку патогенов, но ни в коем случае не должно рассматриваться как «стерилизация».
Таким образом, пастеризация и кипячение являются низкотехнологичными методами, не содержащими химикатов (при условии, что вода чистая); после обработки с предметами необходимо обращаться осторожно для безопасной транспортировки и хранения.
ОЧИСТКА, ДЕЗИНФЕКЦИЯ И СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ХИМИЧЕСКАЯ ДЕЗИНФЕКЦИЯ
Обычные химические дезинфицирующие средства включают спирты, хлор и соединения хлора, глутаровый альдегид, ортофталевый альдегид, перекись водорода, перуксусную кислоту, фенолы и соединения четвертичного аммония (CAQ).
Эти химические вещества могут использоваться по отдельности или в комбинации.
Их необходимо использовать в соответствии с инструкциями производителя на этикетке продукта и только на поверхностях, с которыми они совместимы.
В идеале, коммерческие продукты должны пройти стандартные тесты, чтобы подтвердить то, что указано на этикетке, прежде чем они будут проданы и использованы в медицинских учреждениях.
Однако требования к регистрации продуктов и то, что заявлено на этикетке, сильно различаются от региона к региону.
Химические дезинфицирующие средства сильно различаются по вредному воздействию, которое они могут оказывать на человека и окружающую среду; их следует использовать с осторожностью и только при отсутствии жизнеспособных альтернатив.
Дезинфицирующие средства делятся на три категории в зависимости от их микробицидной активности: Дезинфицирующие средства высокого уровня.
Дезинфицирующие средства высокого уровня (ДАВ) активны в отношении бактерий в вегетативной форме, вирусов (включая нескрытые вирусы), грибков и микобактерий. При длительном контакте они также могут проявлять активность против бактериальных спор.
DAL используются для дезинфекции термочувствительных и полукритических устройств, таких как гибкие оптоволоконные эндоскопы.
Альдегиды (глутаровый альдегид и ортофталевый альдегид) и окислители (например, перекись водорода и надуксусная кислота) относятся к DAL.
Альдегиды не вызывают коррозии и безопасны для использования на большинстве устройств.
Однако они могут способствовать адгезии органических материалов; поэтому перед дезинфекцией особенно важно удалить все прикрепившиеся микроорганизмы.
При неправильном составлении и использовании окислители могут вызывать коррозию.
Однако они могут быть более быстродействующими, нефиксирующими и более безопасными для окружающей среды, чем альдегиды.
В зависимости от температуры DAL обычно требуют от 10 до 45 минут контакта.
После дезинфекции устройства необходимо тщательно промыть стерильной или микрофильтрованной водой, чтобы удалить остатки химических веществ; устройства должны быть высушены путем пропускания раствора на спиртовой основе или продувки чистым отфильтрованным воздухом через каналы устройства перед хранением.
Дезинфицирующие средства среднего уровня
Дезинфицирующее средство (например, этанол), активное против бактерий в вегетативной форме, микобактерий, мицетов и большинства вирусов.
Даже после длительного воздействия он может быть не в состоянии убить споры.
Дезинфицирующие средства низкого уровня
Дезинфицирующие средства низкого уровня (например, соединения четвертичного аммония) активны в отношении бактерий в вегетативной форме (кроме микобактерий), некоторых мицетов и только вирусов с оболочкой.
Во многих случаях вместо таких дезинфицирующих средств достаточно мытья неантисептическим мылом и водой.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ
Стерилизация — это любой процесс, который может инактивировать все микроорганизмы, обнаруженные в объекте или на нем; стандартные процедуры стерилизации могут потребовать изменения активности прионов.11
Тепло — самый надежный способ стерилизации; большинство хирургических инструментов являются термостойкими.
Влажное тепло, используемое в автоклаве в виде пара под давлением, убивает микроорганизмы, денатурируя их белки.
Сухое тепло, используемое в духовке, убивает в результате окисления через гораздо более медленный процесс.
Сухой жар используется для стерилизации чувствительных к влаге материалов (безводных порошков) или предметов, через которые пар не может проникнуть (масла и воски).
Термочувствительные устройства требуют низкотемпературной стерилизации; для этой цели часто используют окись этилена (ЭО), газоплазму перекиси водорода и пары формальдегида.14
Стерилизованные изделия должны храниться в чистом, непыльном и сухом месте, при этом должна быть обеспечена целостность упаковки.
Упаковки, содержащие стерильные материалы, должны быть проверены перед использованием на предмет барьерной целостности и отсутствия влаги.
Если упаковка нарушена, изделия нельзя использовать, а следует снова очистить, упаковать и стерилизовать.
Стерилизация паром Пар является самым надежным средством стерилизации.
Он нетоксичен (при генерировании из воды, не содержащей летучих химикатов), обладает микробицидной активностью широкого спектра действия и хорошей проникающей способностью, недорог и прост в контроле.15,16
Стерилизация требует прямого контакта между объектом, подлежащим стерилизации, и паром при необходимой температуре и давлении в течение заданного времени.
Автоклавы представляют собой специально сконструированные камеры, в которых пар под давлением создает высокие температуры.
Они основаны на том же принципе, что и скороварка.
Существует два основных типа паровых стерилизаторов:
– В автоклавах с гравитационным (нисходящим) удалением пар вводится в верхнюю часть камеры для удаления более холодной и плотной воздушно-паровой смеси со дна камеры. Выпускной клапан закрывается, когда весь воздух удален, позволяя давлению и температуре повышаться. Такие автоклавы используются для стерилизации жидкостей и предметов в корпусах, через которые может проникать пар. Стадия стерилизации обычно длится около 15 минут при 121°C и 103.4 кПа (15 фунтов/кв. дюйм).
– В высоковакуумных автоклавах сначала создается вакуум в стерилизационной камере, а затем вводится пар, что позволяет быстрее и эффективнее подавать пар по всей загрузке. Быстро возрастающие давление и температура позволяют проводить процесс в течение трех минут при температуре 134°C и давлении приблизительно 206.8 кПа (30 фунтов/кв. дюйм).
Инструменты, подлежащие автоклавированию, должны быть завернуты в материалы, которые пропускают пар и сохраняют стерильность обработанного инструмента во время хранения.
Следует избегать перегрузки автоклава, чтобы обеспечить свободный доступ пара по всей загрузке.
Упаковки должны быть промаркированы, чтобы идентифицировать их содержимое и дату стерилизации, а также серийный номер оператора и номер цикла, чтобы облегчить любой отзыв и облегчить ротацию расходных материалов.
Все паровые стерилизаторы должны подвергаться анализу во время установки и регулярно после этого; должны вестись записи обо всех операциях и плановом техническом обслуживании. Весь персонал должен быть тщательно обучен безопасному использованию автоклава6.
КОНТРОЛЬ ПРОЦЕССОВ ОЧИСТКИ, ДЕЗИНФЕКЦИИ И СТЕРИЛИЗАЦИИ
Имеются биологические и химические индикаторы, которые необходимо использовать для рутинного контроля автоклавов.
Биологические индикаторы (ИБ) содержат споры бактерии Geobacillus stearothermophilus.
Имеющиеся в продаже споры или флаконы, содержащие споры, стратегически помещаются в загрузку для стерилизации.
После одного цикла IB культивируют или оценивают на предмет роста, и для успешной стерилизации не должно быть признаков роста.
Химические индикаторы (ХИ) используются для оценки того, были ли достигнуты требуемые время и температура в процессе стерилизации.
Примером CI является автоклавная лента, которую можно прикрепить к внешней стороне упаковки; лента показывает изменение цвета, если упаковка подвергалась воздействию тепла.
Хотя ИС не подходят для индикации того, был ли продукт стерилизован, они могут помочь обнаружить сбои в работе оборудования и выявить процедурные ошибки.
Для высоковакуумного процесса проникновение пара в загрузку зависит от достаточного удаления воздуха.
Это можно проверить двумя способами:
1) С «проверкой на герметичность»: сохраняется ли вакуум или воздух будет выходить? (часто вокруг крышки).
2) Со способностью пара проникать в небольшой пакет полотенец, использованных в тесте «Боуи-Дик».
Если результаты этих проверок удовлетворительны, альтернативной проверкой является «параметрический выпуск».
Эта система основана на проверке того, что цикл стерилизации соответствует всем спецификациям по температуре, давлению и времени, с использованием калиброванных инструментов в дополнение или вместо IB.
Поскольку этот подход основан на измеримых данных и калиброванных инструментах, результаты, как правило, более надежны и намного быстрее, чем при использовании IB.
ДРУГИЕ СТЕРИЛИЗАТОРЫ
Пар также используется в двух других типах стерилизаторов.
В низкотемпературном пароформальдегидном процессе пар (50-80°С) с формальдегидом в газообразном состоянии применяют для стерилизации термочувствительных медицинских изделий (даже с ограниченным просветом).
Как обычно, устройства очищаются, а затем обрабатываются. Сначала создается вакуум; пар вводят последовательными струями с последующим испарением формальдегида.
В конце цикла формальдегид удаляют, а автоклав полностью опорожняют с помощью нескольких струй пара и высокого вакуума.
Химические и биологические индикаторы используются для контроля работы стерилизатора.
Эту систему нельзя использовать с жидкостями, и потенциальная токсичность формальдегида остается проблемой.
В процессе быстрой или немедленной стерилизации (мгновенная стерилизация) пар используется для обработки критически важных устройств, таких как хирургические инструменты, случайно загрязненные во время операции или когда другие средства стерилизации недоступны.
Он никогда не должен использоваться для имплантируемых устройств или для компенсации нехватки основных устройств.
При быстрой стерилизации пористых или непористых предметов невозможно использовать автоклав с гравитационным отводом пара или высоким вакуумом без обертывания или с использованием однократной обертки.
Невозможно дождаться считывания использованных IB из-за скорости повторной обработки устройств.
Если не используются надлежащие контейнеры, существует высокий риск повторного загрязнения обработанных предметов, а также ожогов персонала во время транспортировки к месту использования.
СВЧ
Воздействие микроволн на объекты, содержащие воду, создает тепло из-за трения, возникающего при быстром вращении молекул воды.
До сих пор этот процесс использовался только для дезинфекции мягких контактных линз и прижигания мочевых катетеров.
Однако небольшие объемы воды можно сделать безопасными для пищевых целей путем воздействия микроволн в стеклянной или пластиковой емкости.
Точно так же небольшие стеклянные или пластиковые предметы можно погружать в воду и «дезинфицировать» в микроволновой печи.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ СУХИМ ТЕПЛОМ
Для стерилизации сухим жаром используют сушильные шкафы с горячим воздухом.
Они могут нагреваться до высоких температур и должны быть оснащены вентилятором для равномерного распределения тепла.
Предварительный нагрев осуществляется, по существу, перед началом цикла стерилизации.
Печи с горячим воздухом проще по конструкции и безопаснее в использовании, чем автоклавы, и подходят для стерилизации стеклянной посуды, металлических предметов, порошков и безводных материалов (масла и жира).
Стерилизация занимает два часа при 160°C или один час при 180°C.
Резину, бумагу и ткань не следует обрабатывать во избежание пожара.
ОКИСЬ ЭТИЛЕНА
Оксид этилена (ЭО) используется для стерилизации предметов, чувствительных к теплу, давлению или влаге.
ЭО представляет собой бесцветный легковоспламеняющийся взрывоопасный газ, токсичный для человека.
OE доступен в виде газообразной смеси с гидрохлорфторуглеродами (IFCC) или есть смесь 8.5% OE и 91.5% диоксида углерода; последний дешевле.
Концентрация ЭО, температура, относительная влажность и экспозиция должны поддерживаться на правильном уровне во время процесса для обеспечения стерилизации.
Концентрация газа должна быть от 450 до 1200 мг/л, температура от 37° до 63°C, относительная влажность от 40% до 80%, время воздействия от 1 до 6 часов.
Выдача параметрических значений невозможна, так как концентрация газа и относительная влажность не могут быть легко измерены; IB должен быть включен в каждую загрузку.
Рекомендуемый ИБ — Bacillus atrophaeus; грузы должны находиться в карантине до завершения инкубации IB.
Основными недостатками стерилизации с помощью оригинального оборудования являются длительное время цикла и высокая стоимость.
Стерилизованные предметы должны быть хорошо проветрены после процесса, чтобы удалить все остаточные ОЭ для безопасности пациента.
ПЕРОКСИД ВОДОРОДА ПЛАЗМЕННЫЙ ГАЗ
Плазменный газ генерируется в закрытой камере под высоким вакуумом с использованием радиочастот или микроволновой энергии для возбуждения молекул перекиси водорода и образования заряженных частиц, многие из которых являются высокореактивными свободными радикалами.
Плазменный газ можно использовать для стерилизации чувствительных к теплу и влаге объектов, таких как некоторые пластмассы, электрические/электронные устройства и чувствительные к коррозии металлические сплавы.
В качестве ИБ используют споры G. stearothermophilus.
Это безопасный процесс, и, поскольку аэрация не требуется, стерилизованные предметы доступны для немедленного использования или готовы к хранению.
Однако он не подходит для устройств с глухими каналами, порошками или жидкостями.
Другие недостатки включают высокую стоимость и необходимость в специальном упаковочном материале, поскольку нельзя использовать бумагу или лен.
Кроме того, любой присутствующий жидкий или органический остаток мешает процессу.
ФУМИГАЦИЯ
В последнее время возрос интерес к использованию фумигантов в окружающей среде для борьбы с опасными для здоровья патогенами, такими как устойчивый к метициллину S. aureus и C. difficile.
Доступны различные устройства, различающиеся по стоимости, используемому процессу и типу полевых испытаний, которые они проходят.
Обычная процедура заключается в испарении раствора перекиси водорода в герметичном помещении, таком как палата пациента, для обеззараживания поверхностей.
Аэрация после обработки не требуется, поскольку перекись водорода легко разлагается на кислород и воду.
Полоски со спорами (IB) стратегически размещаются по всей комнате и извлекаются позже, чтобы контролировать эффективность процесса.
Недостатки включают несовместимость с целлюлозными материалами и возможную коррозию электронных устройств.
Диоксид хлора, образующийся на месте, может быть выпущен в виде газа для обеззараживания помещения.
Помещения должны быть не только герметичными, но и затемненными, чтобы солнечный свет не ускорил разложение газа.
Как и перекись водорода, диоксид хлора естественным образом распадается на безвредные побочные продукты.
Озон может обеззараживать поверхности в закрытых помещениях; он очень нестабилен и потенциально опасен для различных материалов, обычно используемых в медицинских учреждениях.
Однако стерилизатор медицинских устройств на основе озона коммерчески доступен.
Газ образуется из кислорода и в конце цикла преобразуется в кислород и воду путем катализа.
Для этого инструмента заявлена широкая совместимость материалов и возможность работы с тонкоканальными устройствами.
УЛЬТРАФИОЛЕТОВАЯ РАДИАЦИЯ
Недавние достижения в технологии ультрафиолетового (УФ) излучения делают микробицидный потенциал УФ-излучения ближнего действия полезным для различных целей.
УФ-лампы широко используются для обеззараживания воды и сточных вод.
Устройства на основе УФ-излучения продаются для дезинфекции воздуха в больницах и клиниках, чтобы уменьшить распространение патогенов, передающихся воздушно-капельным путем.
Эти устройства также продаются для дезинфекции поверхностей в больницах.
УФ-излучение не добавляет никаких химических веществ в очищенную воду и воздух, за исключением образования небольшого количества озона.
Однако он не может проникнуть сквозь грязь, а предметы требуют прямого облучения.
Такие лампы требуют обычной чистки и периодической замены; они могут излучать видимый свет даже после того, как УФ-излучение уменьшилось.
Ссылки:
1. Ассоциация развития медицинского оборудования. Химическая стерилизация и дезинфекция высокого уровня в медицинских учреждениях. АНСИ/ААМИ СТ58:2013.
2. Ассоциация развития медицинского оборудования. Полное руководство по паровой стерилизации и обеспечению стерильности в медицинских учреждениях. АНСИ/ААМИ/СТ79:2010/А4:2013.
3. Руководство по инфекционному контролю окружающей среды в медицинских учреждениях; Рекомендации CDC и Консультативного комитета по практике инфекционного контроля в здравоохранении (HICPAC). ММВР 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf
4. Агентство по регулированию лекарственных средств и изделий медицинского назначения, Министерство здравоохранения Великобритании: обеззараживание и инфекционный контроль; Руководство по обеззараживанию и инфекционному контролю, включая хирургические инструменты, стоматологическое оборудование, эндоскопы и настольные паровые стерилизаторы, декабрь 2014 г. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438.
5. Министерство здравоохранения и долгосрочного ухода Онтарио. Провинциальный консультативный комитет по инфекционным заболеваниям (PIDAC). Передовые методы очистки, дезинфекции и стерилизации во всех медицинских учреждениях, 2012 г. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. пдф.
6. Рутала В.А., Вебер Д.Дж. Руководство по дезинфекции и стерилизации в медицинских учреждениях, 2008 г. Центры по контролю и профилактике заболеваний, Атланта, Джорджия. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/Disinfection_Nov_2008.pdf
7. Сполдинг Э.Х. Химическая дезинфекция медицинских и хирургических материалов. Дезинфекция, стерилизация и консервация, 3-е издание, блок S (ред.), 1968, Lea & Febiger, Филадельфия, Пенсильвания.
8. Международный стандарт ISO 15883-3; 2010, Моечно-дезинфекционные машины. Устанавливает особые требования к моющим дезинфицирующим установкам (МД), предназначенным для опорожнения, промывки, очистки и термической дезинфекции контейнеров, используемых для хранения отходов жизнедеятельности человека, за один рабочий цикл. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078
9. Саттар С.А., Майяр Дж.Ю. Решающая роль протирания в обеззараживании поверхностей окружающей среды, к которым часто прикасаются: обзор текущего состояния и направления на будущее. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.
10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB, et al. Роль больничных поверхностей в передаче новых патогенов, связанных с оказанием медицинской помощи: норовируса, Clostridium difficile и видов Acinetobacter. Am J Infect Control 2010; 38 (5 Приложение 1): S25-33.
11. Рутала В.А., Вебер Д.Дж. Руководство по дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов, загрязненных прионами. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. дои: 10.1086/650197.
12. Мускарелла ЛФ. Риск передачи резистентных к карбапенемам Enterobacteriaceae и связанных с ними «супербактерий» во время эндоскопии желудочно-кишечного тракта. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. дои: 10.4253/wjge.v6.i10.457.
13. Снайдер, ОП. Калибровка термометров в кипящей воде: Точка кипения / Атмосферное давление / Таблицы высот. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Последний доступ от 17 августа 2015 г.]
14. Канемицу К., Имасака Т., Исикава С. и др. Сравнительное исследование газообразной окиси этилена, газовой плазмы перекиси водорода и низкотемпературной паровой стерилизации формальдегидом. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.
15. Сиви Р. Дезинфекция высокого уровня, стерилизация и антисептика: актуальные вопросы обработки медицинских и хирургических инструментов. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.
16. Рутала В.А., Вебер Д.Дж. Новые разработки в переработке полукритических изделий. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.
17. Уилсон А.П.Р., Ливермор Д.М., Оттер Дж.А. и соавт. Профилактика и борьба с грамотрицательными бактериями с множественной лекарственной устойчивостью: рекомендации Совместной рабочей группы. Джей Хосп Инфект 2016; 92, С1-С4.
18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ, et al. Руководство ESCMID по управлению мерами инфекционного контроля для снижения передачи полирезистентных грамотрицательных бактерий у госпитализированных пациентов. Clin Microbiol Infect 2014; Том 20 (Приложение 1), стр. 1–55.
А также:
1. Фрайз А.П., Майяр Ю.Дж. и Саттар С.А. Принципы и практика дезинфекции, консервации и стерилизации. 2013 г., 5-е изд., Wiley-Blackwell Publishing, Оксфорд, Англия; ISBN-13: 978-1444333251.
2. Макдоннелл Г. Антисептика, дезинфекция и стерилизация: типы, действие и устойчивость; Американское общество микробиологии, Вашингтон, округ Колумбия, 2007 г. Доступно в электронном виде через книги Google http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+disinfect ion,+and+sterilation&hl=en&ei=Z2wvTeCBAYGC8gbls8y7CQ&sa=X&oi =book_result&ct=result&res num=1&ved=0CDEQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false
3. McDonnell G. & Sheard D. Практическое руководство по обеззараживанию в здравоохранении. Уайли-Блэквелл, Чичестер, 2012 г.
4. Куинн М.М. и соавт. Очистка и дезинфекция поверхностей в здравоохранении: на пути к интегрированной системе профилактики инфекций и профессиональных заболеваний? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.
5. Рот С., Файхтингер Дж., Хертель С. Характеристика инактивации спор Bacillus subtilis в процессах стерилизации газовой плазмой при низком давлении и температуре. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.
6. Саттар С.А. Перспективы и подводные камни последних достижений в области химических средств предотвращения распространения внутрибольничных инфекций поверхностями окружающей среды. Am J Infect Control 2010; 38: С34-40.
7. Огбонна А., Ойибо П.Г., Ону К.М. Бактериальное загрязнение стетоскопов, используемых медицинскими работниками: последствия для общественного здравоохранения. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.
8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, et al. Меры инфекционного контроля для ограничения распространения Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Приложение 5): 2-20. 9. Хамфрис Р.М., Макдоннелл Г. Супербактерии на дуоденоскопах: проблема очистки и дезинфекции многоразовых устройств. J Clin Microbiol 2015: 53:3118-3125.
Читайте также:
FG MICRO H2O2: Focaccia Group запускает новую систему для дезинфекции машин скорой помощи
Очистка, дезинфекция и стерилизация медицинских помещений и помещений
Как правильно очистить и почистить машину скорой помощи?
Вибрация носилок скорой помощи: исследование систем демпфирования
Очистка после смерти, биоремедиация и стерилизация в машинах скорой помощи