Egészségügyi rekeszek és környezetek tisztítása, fertőtlenítése és sterilizálása
A tisztítás, fertőtlenítés és sterilizálás a fertőzésmegelőzés és -ellenőrzés sarokkövei az egészségügyi helyiségekben és környezetben
E bizonyítékok ellenére sok olyan helyzet van, amikor ezek az eljárások hiányoznak, vagy akár hiányoznak is, és ahol a személyzet gyengén vagy nem kellően képzett.
Tisztítás, fertőtlenítés és sterilizálás, néhány alapfogalom:
TISZTÍTÁS ÉS ELŐTISZTÍTÁS
Míg a „tisztítás” a látható szennyeződések eltávolítását jelenti, az „előtisztítás” kifejezés a testnedvek és egyéb szennyeződések eltávolítását jelenti a fertőtlenítés vagy sterilizálás előtt.
Megfelelő előtisztítással jelentősen csökkenthető a kórokozók mikrobiális terhelése, míg a szerves és szervetlen maradványok eltávolítása megkönnyítheti a helyreállítási folyamatot.
Az alapos tisztítás elengedhetetlen a hatékony fertőtlenítéshez vagy sterilizáláshoz
Az eszközök hatékony tisztítása és előtisztítása gyakran vegyszereket igényel, mechanikai hatásokkal és hővel kombinálva.
Kézzel és/vagy automata gépekkel is végrehajtható.
A kézi előtisztításhoz mosószereket vagy enzimeket kell használni a kezelő által végzett mechanikai tevékenységgel (dörzsölés, kefélés, öblítés), hogy eltávolítsák a szennyeződéseket az újrafeldolgozott eszközök külső és belső oldaláról.
Tisztítás vagy fertőtlenítés után az eszközöket alaposan le kell öblíteni a vegyszermaradványok eltávolítása érdekében, majd a gyártó ajánlása szerint szárítani kell.
Minden újrafeldolgozott eszközt megfelelően kell tárolni, hogy elkerüljük a sérülést vagy az újraszennyeződést.
TISZTÍTÁS, FERTŐTLENÍTÉS ÉS STERILIZÁLÁS: A SZÁLLÁS OSZTÁLYOZÁSA
1968-ban Spaulding az orvosi/sebészeti eszközöket kritikus, félig kritikus és nem kritikus eszközök közé sorolta a fertőzést terjesztő képességük alapján.
A kritikus eszközök általában steril szövetbe, az érrendszerbe vagy rendszerekbe jutnak be, amelyeken keresztül a vér áramlik; példák a sebészeti műszerek és az érkatéterek.
Ezeket az eszközöket használat előtt megfelelően és biztonságosan elő kell tisztítani és sterilizálni kell.
A félig kritikus eszközök ép nyálkahártyával vagy ép bőrrel érintkeznek; Ilyenek például a száloptikai endoszkópok, a hüvelyszondák és az asszisztált légzés felszerelés.
Ezek az elemek használat előtt megfelelő előtisztítást és legalább magas szintű fertőtlenítést igényelnek.
Az ép bőrrel érintkező, nem kritikus eszközök (például vérnyomásmérő mandzsetta, sztetoszkóp) esetén alacsony a fertőzések terjedésének kockázata, kivéve a kórokozók egészségügyi személyzet kezébe kerülését.
Általában elegendő ezeknek az eszközöknek semleges tisztítószerrel vagy 70%-os víz és etanol oldattal végzett rendszeres tisztítása és letörlése (az újrafelhasználható ágytálak, bár nem kritikus eszközöknek számítanak, szigorúbb tisztítást, mosást és fertőtlenítést igényelnek, különösen, ha például vankomicin-rezisztens enterococcusok vagy Clostridium difficile gyanúja merül fel).
A legtöbb környezeti felület a betegszobában és a várótermekben nem tekinthető kritikusnak, és nem igényel rutinszerű fertőtlenítést.
A nagy gyakorisággal érintkező felületek azonban, különösen a beteg közvetlen közelében, rendszeres fertőtlenítést igényelnek, hogy elkerüljük a kórokozók átjutását a kezelőszemélyzet kezébe.
A legutóbbi irányelvekben nincs konkrét utalás arra vonatkozóan, hogy mikor, hogyan és milyen gyakran kell az ilyen felületeket fertőtleníteni. 9,10.
Bár a Spaulding 7 besorolási rendszere továbbra is érvényes, hozzá kell igazítani a jelenlegi igényekhez.
A fizikai és kémiai anyagokkal szembeni szokatlan rezisztenciájú prionok 11 és a Clostridium difficile spórák 10 vagy a karbapenémiára rezisztens Enterobacteriaceae 12 által okozott, gondozással összefüggő fertőzések megjelenése az orvostechnikai eszközök újrafeldolgozásának felülvizsgálatát hajtja végre.
A prionokkal szennyezett eszközök sterilizálási protokolljait messze meghaladja a szokásosan használt 11.
Egyes fertőtlenítőszerek (pl. aldehidek), amelyeket általában a gyomor-bélrendszeri endoszkópok újrafeldolgozására használnak, hosszabb érintkezési időre van szükségük a C. difficile spórák elpusztításához.
A hőérzékeny eszközöket, például a flexibilis optikai endoszkópokat egyre gyakrabban használják olyan műveleteknél, amelyek során szándékosan megsértik a nyálkahártya integritását, átlépve a „kritikus” és „félkritikus” eszközök közötti határvonalat.
ORVOSI ESZKÖZÖK ÚJRAFELDOLGOZÁSA: FERTŐTLENÍTÉS
A „fertőtlenítés” a kórokozók számának csökkentését jelenti egy élettelen felületen vagy tárgyon hővel, vegyszerekkel vagy mindkettővel.
A legtöbb fertőtlenítő eljárás csekély hatást fejt ki a baktériumspórák ellen; a spórák mennyiségének bármilyen csökkenése főként mechanikai hatással és mosással érhető el.
OLDALIÁBAN AZ AMBULÁCIÓBAN ELSŐ SZÁM: LÁTOGASSA EL AZ ORION BOOTHAT VÉSZHELYZETI EXPO -n
TISZTÍTÁS, FERTŐTLENÍTÉS ÉS STERILIZÁLÁS: PASTURIZÁLÁS ÉS FORRÁS
A félig kritikus eszközöket, például a légzési terápiához vagy az érzéstelenítéshez használt eszközöket vízben melegítéssel pasztőrözhetjük.
Valamennyi részüknek legalább 30 percig teljesen bemerítve kell maradnia 65-77°C-on.
A magasabban fekvő helyeken több időre van szükség a víz forráspontjának eléréséhez, mivel ez a tengerszinttől távolodva növekszik. 13
A hőálló eszközök körülbelül 10 percig tartó forrásban lévő vízben áztatása jelentősen csökkentheti a kórokozók mikrobiális terhelését, de soha nem tekinthető „sterilizálásnak”.
A pasztőrözés és a forralás ezért alacsony technológiájú, vegyszermentes módszerek (amíg a víz tiszta); kezelés után a tárgyakat óvatosan kell kezelni a biztonságos szállítás és tárolás érdekében.
TISZTÍTÁS, FERTŐTLENÍTÉS ÉS STERILIZÁLÁS: VEGYI FERTŐTLENÍTÉS
A gyakori kémiai fertőtlenítőszerek közé tartoznak az alkoholok, a klór és a klórvegyületek, a glutáraldehid, az orto-ftálaldehid, a hidrogén-peroxid, a perecetsav, a fenolok és a kvaterner ammóniumvegyületek (CAQ).
Ezek a vegyszerek önmagukban vagy kombinációban használhatók.
Ezeket a gyártó termékcímkéjén található utasításoknak megfelelően, és csak olyan felületeken szabad használni, amelyekkel kompatibilisek.
Ideális esetben a kereskedelmi termékeknek át kell menniük a szabványos teszteken, amelyek alátámasztják a címkén feltüntetetteket, mielőtt eladják és egészségügyi intézményekben felhasználják őket.
A termékek regisztrálására és a címkén feltüntetett adatokra vonatkozó követelmények azonban régiónként nagyon eltérőek.
A vegyi fertőtlenítőszerek igen eltérőek az emberekre és a környezetre gyakorolt káros hatások tekintetében; óvatosan kell őket használni, és csak akkor, ha nem állnak rendelkezésre életképes alternatívák.
A fertőtlenítőszereket mikrobaölő hatásuk szerint három kategóriába sorolják: Magas szintű fertőtlenítőszerek
A magas szintű fertőtlenítőszerek (DAL) hatásosak a vegetatív formában lévő baktériumok, vírusok (beleértve a nem rejtett vírusokat is), gombák és mikobaktériumok ellen. Hosszabb érintkezési idővel baktériumspórák ellen is hatásosak lehetnek.
A DAL-okat hőérzékeny eszközök és félkritikus eszközök, például rugalmas száloptikai endoszkópok fertőtlenítésére használják.
Az aldehidek (glutáraldehid és ortoftálaldehid) és az oxidálószerek (pl. hidrogén-peroxid és perecetsav) DAL-ok.
Az aldehidek nem korrozívak, és a legtöbb eszközön biztonságosak.
Elősegíthetik azonban a szerves anyagok tapadását; ezért különösen fontos, hogy fertőtlenítés előtt távolítsuk el a rátapadt mikroorganizmusokat.
Ha nem megfelelően formulázzák és használják, az oxidálószerek maró hatásúak lehetnek.
Azonban gyorsabban hatnak, nem fixálnak és biztonságosabbak a környezet számára, mint az aldehidek.
A hőmérséklettől függően a DAL-ok általában 10-45 perces érintkezési időt igényelnek.
A fertőtlenítés után az eszközöket steril vagy mikroszűrt vízzel alaposan le kell mosni, hogy eltávolítsák a vegyszermaradványokat; az eszközöket ezután meg kell szárítani úgy, hogy alkohol alapú oldatot engedünk át, vagy tiszta, szűrt levegőt fújunk át a készülék csatornáin tárolás előtt.
Közepes szintű fertőtlenítőszerek
Fertőtlenítőszer (pl. etanol), amely a vegetatív formában lévő baktériumok, mikobaktériumok, gombák és a legtöbb vírus ellen aktív.
Előfordulhat, hogy hosszan tartó expozíció után sem tudja elpusztítani a spórákat.
Alacsony szintű fertőtlenítőszerek
Az alacsony szintű fertőtlenítőszerek (pl. kvaterner ammóniumvegyületek) hatásosak a vegetatív formában lévő baktériumok (kivéve a mikobaktériumok), egyes gombák és csak bevont vírusok ellen.
Sok esetben az ilyen fertőtlenítőszerek helyett elegendő a nem antiszeptikus szappannal és vízzel történő mosás.
STERILIZÁCIÓ
A sterilizálás minden olyan eljárás, amely képes inaktiválni az objektumban vagy azon található összes mikroorganizmust; a standard sterilizálási eljárások a prionok aktivitásának változását tehetik szükségessé.11
A hő a sterilizálás legmegbízhatóbb módja; a legtöbb sebészeti műszer hőálló.
Az autoklávban nyomás alatti gőzként használt nedves hő elpusztítja a mikroorganizmusokat azáltal, hogy denaturálja azok fehérjét.
A kemencében használt száraz hő oxidációval öl meg, sokkal lassabb folyamaton keresztül.
Száraz hőt használnak a nedvességre érzékeny anyagok (vízmentes porok) vagy olyan tárgyak sterilizálására, amelyeken a gőz nem tud áthatolni (olajok és viaszok).
A hőérzékeny eszközök alacsony hőmérsékletű sterilizálást igényelnek; Erre a célra gyakran használnak etilén-oxidot (EO), hidrogén-peroxid gázplazmát és formaldehid gőzt.14
A sterilizált eszközöket tiszta, pormentes és száraz helyen kell tárolni, és a csomagolás sértetlenségét garantálni kell.
A steril kellékeket tartalmazó csomagokat használat előtt ellenőrizni kell a gát sértetlensége és a nedvesség hiánya szempontjából.
Ha a csomagolás sérül, az eszközöket nem szabad használni, hanem újra meg kell tisztítani, becsomagolni és sterilizálni.
Gőzsterilizálás A gőz a sterilizálás legmegbízhatóbb módja.
Nem mérgező (ha vízből állítják elő, amely nem tartalmaz illékony vegyszereket), széles spektrumú mikrobaölő aktivitással és jó áthatolóképességgel rendelkezik, valamint olcsó és könnyen ellenőrizhető.15,16
A sterilizáláshoz a sterilizálandó tárgy és a gőz közötti közvetlen érintkezés szükséges, a kívánt hőmérsékleten és nyomáson, adott ideig.
Az autoklávok speciálisan kialakított kamrák, ahol a nyomás alatt lévő gőz magas hőmérsékletet hoz létre.
Ugyanazon az elven alapulnak, mint a kukta.
A gőzsterilizátornak két fő típusa van:
– A gravitációs (lefelé irányuló) eltávolítású autoklávokban gőzt vezetnek be a kamra tetejébe, hogy a hidegebb, sűrűbb levegő-gőz keveréket eltávolítsák a kamra aljáról. A kipufogószelep bezárul, amikor az összes levegőt eltávolították, lehetővé téve a nyomás és a hőmérséklet növekedését. Az ilyen autoklávokat folyadékok és tárgyak sterilizálására használják olyan burkolatokban, amelyeken a gőz képes áthatolni. A sterilizálási fázis általában körülbelül 15 percig tart 121 °C-on 103.4 kilopascal (15 font/négyzethüvelyk) mellett.
– A nagyvákuumú autoklávokban először vákuumot hoznak létre a sterilizáló kamrában, majd gőzt vezetnek be, ami gyorsabb és hatékonyabb gőzbejutást tesz lehetővé a teljes töltet alatt. A gyorsan növekvő nyomás és hőmérséklet 134 perces folyamatidőt tesz lehetővé 206.8 °C-on, körülbelül 30 kilopascal (XNUMX font/négyzethüvelyk) mellett.
Az autoklávozandó eszközöket olyan anyagokba kell csomagolni, amelyek lehetővé teszik a gőz behatolását, és a kezelt eszközt sterilen tartják a tárolás során.
El kell kerülni az autokláv túlterhelését, hogy a gőz a töltés során szabadon hozzáférhessen.
A csomagokon fel kell tüntetni a tartalmukat és a sterilizálás dátumát, valamint az üzemeltető sorozatszámát és ciklusszámát, hogy megkönnyítsék a visszahívást és a kellékek forgását.
Minden gőzsterilizátort elemezni kell a beszereléskor és azt követően rendszeresen; minden műveletről és rutin karbantartásról feljegyzést kell vezetni. Minden személyzetet alaposan ki kell képezni az autokláv6 biztonságos használatára vonatkozóan.
A TISZTÍTÁSI, FERTŐTLENÍTÉSI ÉS STERILIZÁLÁSI FOLYAMATOK ELLENŐRZÉSE
Biológiai és kémiai indikátorok állnak rendelkezésre, és ezeket az autoklávok rutinszerű monitorozására kell használni.
A biológiai indikátorok (IB) a Geobacillus stearothermophilus baktérium spóráit tartalmazzák.
A kereskedelemben kapható spórákat vagy spórákat tartalmazó palackokat stratégiailag elhelyezzük a sterilizálandó töltetben.
Egy ciklus után az IB-ket tenyésztik vagy növekedésükre értékelik, és a sikeres sterilizáláshoz nem mutathatnak növekedést.
A kémiai indikátorok (CI-k) segítségével értékelik, hogy a sterilizálási folyamat során elérték-e a szükséges időt és hőmérsékletet.
Példa a CI-re az autokláv szalag, amely a csomagolás külső oldalára rögzíthető; a szalag színváltozást mutat, ha a csomagot hőhatásnak tették ki.
Bár az IC-k nem alkalmasak annak jelzésére, hogy egy terméket sterilizáltak-e, segíthetnek a berendezés hibáinak felderítésében és az eljárási hibák azonosításában.
A nagyvákuumú eljárásnál a gőz behatolása a terhelésbe a megfelelő levegőelvezetéstől függ.
Ezt kétféleképpen lehet ellenőrizni:
1) Szivárgásteszttel: fenntartható a vákuum, vagy kilép a levegő? (gyakran a fedél körül).
2) A gőz képes áthatolni a „Bowie Dick” tesztben használt kis csomag törölközőn.
Ha ezeknek az ellenőrzéseknek az eredménye kielégítő, egy alternatív ellenőrzés a „paraméteres kioldás”.
Ez a rendszer annak ellenőrzésén alapul, hogy a sterilizálási ciklus megfelel-e a hőmérsékletre, nyomásra és időre vonatkozó összes előírásnak, kalibrált műszereket használva az IB-k mellett vagy helyett.
Mivel ez a megközelítés mérhető adatokon és kalibrált műszereken alapul, az eredmények általában megbízhatóbbak és sokkal gyorsabbak, mint az IB-k használata.
EGYÉB STERILIZÁLÓK
A gőzt két másik típusú sterilizátorban is használják.
Az alacsony hőmérsékletű gőz-formaldehid eljárás során gőzt (50-80°C) gáz halmazállapotú formaldehiddel használnak a hőérzékeny orvostechnikai eszközök (még a korlátozott lumenűek) sterilizálására is.
A szokásos módon az eszközöket megtisztítják, majd feldolgozzák. Először vákuumot hoznak létre; gőzt vezetnek be egymás utáni fúvókákban, majd a formaldehidet elpárologtatják.
A ciklus végén a formaldehidet eltávolítják, és az autoklávot több gőzsugárral és nagyvákuummal teljesen kiürítik.
A sterilizáló teljesítményének nyomon követésére kémiai és biológiai mutatókat használnak.
Ez a rendszer nem használható folyadékokkal, és a formaldehid lehetséges toxicitása továbbra is probléma.
A gyors vagy azonnali sterilizálási folyamatban (flashsterilizálás) gőzzel kezelik a kritikus eszközöket, például a műtét során véletlenül szennyezett sebészeti eszközöket, vagy ha más sterilizálási mód nem áll rendelkezésre.
Soha nem használható beültethető eszközökhöz vagy az alapvető eszközök hiányának kompenzálására.
Porózus vagy nem porózus tárgyak gyors sterilizálásakor nem lehet gravitációs gőzeltávolítással vagy nagyvákuummal ellátott autoklávot használni csomagolás nélkül vagy egyetlen burkolat használata nélkül.
Az eszközök újrafeldolgozásának gyorsasága miatt nem lehet megvárni a használt IB-k leolvasását.
A megfelelő tárolóedények használata nélkül nagy a kockázata a kezelt tárgyak újraszennyeződésének, valamint a személyzet égési sérüléseinek a felhasználási helyre történő szállítás során.
MIKROHULLÁMÚ SÜTŐ
A vizet tartalmazó tárgyak mikrohullámú hatásának kitéve hő keletkezik a vízmolekulák gyors forgása miatti súrlódás miatt.
Eddig ezt az eljárást csak lágy kontaktlencsék fertőtlenítésére és húgyúti katéterek kauterizálására használták.
Kis mennyiségű víz azonban biztonságossá tehető élelmiszeripari célokra, ha üveg- vagy műanyag edényben mikrohullámú sütőnek teszik ki.
Hasonlóképpen a kisméretű üveg vagy műanyag tárgyak vízbe meríthetők, és mikrohullámú sütőben „fertőtleníthetők”.
SZÁRAZ HŐSTERILIZÁLÁS
A forró levegős kemencéket száraz hővel történő sterilizálásra használják.
Magas hőmérsékletet érhetnek el, és ventilátorral kell felszerelni az egyenletes hőelosztás érdekében.
Az előmelegítés lényegében a sterilizálási ciklus megkezdése előtt történik.
A forró levegős sütők egyszerűbb kialakításúak és biztonságosabbak, mint az autoklávok, és alkalmasak üvegáruk, fémtárgyak, porok és vízmentes anyagok (olaj és zsír) sterilizálására.
A sterilizálás 160°C-on két órát, 180°C-on egy órát vesz igénybe.
A tűzveszély elkerülése érdekében a gumit, papírt és szövetet nem szabad kezelni.
ETILÉN-OXID
Az etilén-oxidot (EO) hőre, nyomásra vagy nedvességre érzékeny tárgyak sterilizálására használják.
Az EO színtelen, gyúlékony, robbanásveszélyes gáz, amely mérgező az emberre.
Az OE hidroklór-fluor-szénhidrogénekkel (IFCC) vagy 8.5% OE-t és 91.5% szén-dioxidot tartalmazó keverék formájában kapható; utóbbi olcsóbb.
Az EO-koncentrációt, hőmérsékletet, relatív páratartalmat és expozíciót a megfelelő szinten kell tartani a folyamat során a sterilizálás érdekében.
A gázkoncentrációnak 450 és 1200 mg/L között, a hőmérsékletnek 37° és 63°C között, a relatív páratartalomnak 40% és 80% között kell lennie, az expozíciónak pedig 1 és 6 óra között kell lennie.
A paraméteres értékek kiadása nem lehetséges, mivel a gázkoncentráció és a relatív páratartalom nem mérhető könnyen; az IB-t minden terhelésnek tartalmaznia kell.
Az ajánlott IB a Bacillus atrophaeus; a rakományokat karanténban kell tartani, amíg az IB inkubációja be nem fejeződik.
Az OE-vel történő sterilizálás fő hátrányai a hosszú ciklusidők és a magas költségek.
A sterilizált tárgyakat a folyamat után jól szellőztetni kell, hogy a páciens biztonsága érdekében eltávolítsák az összes visszamaradt OE-t.
HIDROGÉN-PEROXID PLAZMA GÁZ
A plazmagázt zárt kamrában, nagy vákuumban állítják elő rádiófrekvenciák vagy mikrohullámú energia felhasználásával hidrogén-peroxid gázmolekulák gerjesztésére és töltött részecskék előállítására, amelyek közül sok nagyon reaktív szabad gyökök.
A plazmagáz hő- és nedvességérzékeny tárgyak, például bizonyos műanyagok, elektromos/elektronikus eszközök és korrózióra érzékeny fémötvözetek sterilizálására használható.
A G. stearothermophilus spóráit IB-ként használjuk.
Ez egy biztonságos eljárás, és mivel nincs szükség levegőztetésre, a sterilizált tárgyak azonnali használatra vagy tárolásra készen állnak.
Nem alkalmas azonban vakcsatornás készülékekhez, porokhoz vagy folyadékokhoz.
További hátrányok közé tartozik a magas költségek és a speciális csomagolóanyagok szükségessége, mivel papír vagy vászon nem használható.
Ezenkívül a jelenlévő folyékony vagy szerves maradékok zavarják a folyamatot.
FERTŐTLENÍTÉS
A közelmúltban megnőtt az érdeklődés a füstölőszerek környezeti felhasználása iránt az egészségre veszélyes kórokozók, például a meticillinrezisztens S. aureus és a C. difficile leküzdésére.
Különféle eszközök állnak rendelkezésre, amelyek költsége, az alkalmazott folyamat és a helyszíni tesztelés típusa változik.
Gyakori eljárás a hidrogén-peroxid oldat elpárologtatása zárt helyiségben, például betegszobában, a felületek fertőtlenítésére.
Nincs szükség utókezelésre levegőztetésre, mert a hidrogén-peroxid könnyen oxigénné és vízzé bomlik.
A spóracsíkok (IB) stratégiailag vannak elhelyezve a helyiségben, és később visszakereshetők a folyamat hatékonyságának ellenőrzése érdekében.
A hátrányok közé tartozik a cellulóz anyagokkal való összeférhetetlenség és az elektronikus eszközök esetleges korróziója.
A helyszínen keletkező klór-dioxid gázként szabadítható fel a helyiség fertőtlenítésére.
A helyiségeket nemcsak le kell zárni, hanem sötétíteni is kell, hogy a napfény ne gyorsítsa fel a gáz lebomlását.
A hidrogén-peroxidhoz hasonlóan a klór-dioxid is természetesen ártalmatlan melléktermékekké bomlik.
Az ózon fertőtlenítheti a felületeket a zárt terekben; nagyon instabil és potenciálisan káros az egészségügyi intézményekben általában előforduló különféle anyagokra.
A kereskedelemben azonban kapható ózon alapú orvosi eszköz sterilizáló.
A gáz oxigénből keletkezik, és a ciklus végén katalízis útján oxigénné és vízzé alakítja.
Ehhez a műszerhez széles anyagkompatibilitást és vékonycsatornás eszközök kezelésének képességét állítják.
ULTRAIBOLYA SUGÁRZÁS
Az ultraibolya (UV) fénytechnológia közelmúltbeli fejlődése a rövid hatótávolságú UV-sugárzás mikrobicid potenciálját számos felhasználási területen hasznossá teszi.
Az UV lámpákat széles körben használják víz és szennyvíz fertőtlenítésére.
Az UV alapú eszközöket a kórházak és klinikák légfertőtlenítésére a levegőben terjedő kórokozók terjedésének csökkentése érdekében forgalmazzák.
Ezeket az eszközöket kórházi környezeti felületek fertőtlenítésére is forgalmazzák.
Az UV-sugárzás nem ad semmilyen vegyszert a kezelt vízhez és levegőhöz, kivéve az alacsony ózonszintet.
A szennyeződésen azonban nem tud áthatolni, és a tárgyak közvetlen sugárzást igényelnek.
Az ilyen lámpák normál tisztítást és időszakos cserét igényelnek; látható fényt bocsátanak ki az UV-sugárzás csökkenése után is.
Referenciák:
1. Egyesület az Orvosi Műszerek Fejlesztéséért. Vegyi sterilizálás és magas szintű fertőtlenítés az egészségügyi intézményekben. ANSI/AAMI ST58:2013.
2. Egyesület az Orvosi Műszerek Fejlesztéséért. Átfogó útmutató a gőzsterilizáláshoz és a sterilitás biztosításához az egészségügyi intézményekben. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.
3. Irányelvek a környezeti fertőzések ellenőrzésére az egészségügyi intézményekben; A CDC és az Egészségügyi Fertőzés-ellenőrzési Gyakorlatok Tanácsadó Bizottsága (HICPAC) ajánlásai. MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf
4. Gyógyszerek és Egészségügyi Termékek Szabályozó Ügynöksége, Egyesült Királyság Egészségügyi Minisztériuma: Dekontamináció és fertőzések ellenőrzése; Útmutató a fertőtlenítéshez és fertőzések ellenőrzéséhez, beleértve a sebészeti műszereket, fogászati berendezéseket, endoszkópokat és asztali gőzsterilizálókat, 2014. december. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438
5. Ontariói Egészségügyi és Hosszú távú Gondozási Minisztérium. Tartományi Fertőző Betegségügyi Tanácsadó Bizottság (PIDAC). Tisztításra, fertőtlenítésre és sterilizálásra vonatkozó legjobb gyakorlatok minden egészségügyi ellátásban, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.
6. Rutala WA, Weber DJ. Útmutató az egészségügyi létesítményekben történő fertőtlenítéshez és sterilizáláshoz, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Disinfection_Nov_2008.pdf
7. Spaulding EH. Orvosi és sebészeti anyagok vegyi fertőtlenítése. Fertőtlenítés, sterilizálás és megőrzés, 3. kiadás, Block S (Ed), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.
8. ISO 15883-3 nemzetközi szabvány; 2010, Mosó-fertőtlenítők. Különleges követelményeket határoz meg a mosó-fertőtlenítőkre (WD), amelyeket emberi hulladék tárolására szolgáló tartályok ürítésére, öblítésére, tisztítására és termikus fertőtlenítésére szánnak, egyetlen működési cikluson keresztül. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078
9. Sattar SA, Maillard JY. A törlés döntő szerepe a nagy tapintású környezeti felületek fertőtlenítésében: A jelenlegi állapot és a jövőre vonatkozó irányok áttekintése. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.
10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB és társai. A kórházi felületek szerepe a feltörekvő egészségügyi ellátással összefüggő kórokozók átvitelében: norovírus, Clostridium difficile és Acinetobacter fajok. Am J Infect Control 2010; 38 (5 1. melléklet): S25-33.
11. Rutala WA, Weber DJ. Útmutató a prionnal szennyezett orvosi műszerek fertőtlenítéséhez és sterilizálásához. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.
12. Muscarella LF. A karbapenem-rezisztens Enterobacteriaceae és a kapcsolódó „szuperbaktériumok” átvitelének kockázata a gyomor-bélrendszeri endoszkópia során. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.
13. Snyder, OP. A hőmérők kalibrálása forrásban lévő vízben: Forráspont / Atmoszférikus nyomás / Magasság táblázatok. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Ultimo accesso 17 agosto 2015]
14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S et al. Az etilén-oxid gáz, a hidrogén-peroxid gázplazma és az alacsony hőmérsékletű gőz formaldehid sterilizálás összehasonlító vizsgálata. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.
15. Seavey R. Magas szintű fertőtlenítés, sterilizálás és antiszepszis: az orvosi és sebészeti műszerek újrafeldolgozásának aktuális kérdései. Am J Infect Control 2013;41 (5. melléklet): S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.
16. Rutala WA, Weber DJ. Új fejlesztések a félkritikus elemek újrafeldolgozásában. Am J Infect Control 2013;41 (5. melléklet): S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.
17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA et al. A többszörösen rezisztens Gramnegatív baktériumok megelőzése és ellenőrzése: a közös munkacsoport ajánlásai. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.
18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ és mtsai. Az ESCMID irányelvei a fertőzés-ellenőrzési intézkedések kezelésére a multirezisztens Gram-negatív baktériumok átvitelének csökkentésére kórházi betegeknél. Clin Microbiol Infect 2014; 20. kötet (Suppl s1), 1–55.
Továbbá:
1. Fraise AP, Maillard YJ és Sattar SA. A fertőtlenítés, a tartósítás és a sterilizálás elvei és gyakorlata. 2013, 5. kiadás, Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, Anglia; ISBN-13: 978- 1444333251.
2. McDonnell G. Antiszepszis, fertőtlenítés és sterilizálás: típusok, hatások és rezisztencia; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. Elérhető elektronikusan a Google könyveken keresztül http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+disinfect ion,+and+sterilization&hl=en&ei=Z2wvTeCBAYs8C8CgQoCBAYs7C1 =book_result&ct=result&res num=0&ved=6CDEQXNUMXAEwAA#v=onepage&q&f=false
3. McDonnell G. & Sheard D. Gyakorlati útmutató a dekontaminációhoz az egészségügyben. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.
4. Quinn, MM et al. Környezeti felületek tisztítása és fertőtlenítése az egészségügyben: a fertőzések és foglalkozási megbetegedések megelőzésének integrált kerete felé? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.
5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Bacillus subtilis spore inaktiváció jellemzése alacsony nyomású, alacsony hőmérsékletű gázplazma sterilizálási eljárásokban. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.
6. Sattar SA. Ígéretek és buktatók a közelmúltban a nozokomiális fertőzések környezeti felületeken történő terjedésének megakadályozását célzó vegyi eszközök terén. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.
7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Az egészségügyi dolgozók által használt sztetoszkópok bakteriális szennyeződése: közegészségügyi vonatkozások. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.
8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH és mtsai. Fertőzésvédelmi intézkedések a Clostridium difficile terjedésének korlátozására. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (5. melléklet): 2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Szuperbaktériumok a duodenoszkópokon: az újrafelhasználható eszközök tisztításának és fertőtlenítésének kihívása. J. Clin. Microbiol. 2015: 53:3118-3125.
Olvassa el még:
Emergency Live Még több…Élő: Töltse le újságja új ingyenes alkalmazását IOS és Android rendszerre
FG MICRO H2O2: A Focaccia Group elindítja a mentőautók fertőtlenítésének új rendszerét
Egészségügyi rekeszek és környezetek tisztítása, fertőtlenítése és sterilizálása
Mentős fertőtlenítés kompakt légköri plazmakészülékkel: tanulmány Németországból
Hogyan kell a szennyeződéseket szennyezettségmentesíteni, és hogyan tisztítsák meg a mentőt?
A mentőhordágy vibrációja: Tanulmány a csillapítórendszerekről
Halál utáni tisztítás, bioremediáció és sterilizálás a mentőkben