Čistenie, dezinfekcia a sterilizácia zdravotníckych priestorov a prostredia
Čistenie, dezinfekcia a sterilizácia sú základnými kameňmi prevencie a kontroly infekcií v zdravotníckych priestoroch a prostrediach
Napriek týmto dôkazom existuje veľa situácií, v ktorých tieto postupy chýbajú alebo dokonca chýbajú a v ktorých je personál nedostatočne alebo nedostatočne vyškolený.
Čistenie, dezinfekcia a sterilizácia, niektoré základné pojmy:
ČISTENIE A PREDČISTENIE
Zatiaľ čo „čistenie“ znamená odstránenie viditeľných nečistôt, výraz „predčistenie“ sa vzťahuje na odstránenie telesných tekutín a iných nečistôt pred dezinfekciou alebo sterilizáciou.
Adekvátne predčistenie môže podstatne znížiť mikrobiálnu záťaž patogénmi, zatiaľ čo odstránenie organických a anorganických zvyškov môže uľahčiť proces obnovy.
Pre účinnú dezinfekciu alebo sterilizáciu je nevyhnutné dôkladné čistenie
Efektívne čistenie a predčistenie zariadení často vyžaduje chemikálie v kombinácii s mechanickým pôsobením a teplom.
Môže sa vykonávať ručne a/alebo pomocou automatizovaných strojov.
Manuálne predčistenie vyžaduje použitie čistiacich prostriedkov alebo enzýmov v kombinácii s mechanickou činnosťou vykonávanou obsluhou (trenie, kefovanie, oplachovanie), aby sa odstránili nečistoty z vonkajšej a vnútornej strany zariadení, ktoré sa repasujú.
Po vyčistení alebo dezinfekcii je potrebné zariadenia dôkladne opláchnuť, aby sa odstránili prípadné zvyšky chemikálií, a následne vysušiť podľa odporúčania výrobcu.
Všetky repasované pomôcky sa musia správne skladovať, aby sa predišlo poškodeniu alebo rekontaminácii.
ČISTENIE, DEZINFEKCIA A STERILIZÁCIA: KLASIFIKÁCIA SPAULDINGU
V roku 1968 Spaulding klasifikoval lekárske/chirurgické zariadenia ako kritické, semikritické a nekritické na základe ich potenciálu šíriť infekciu.
Kritické zariadenia bežne vstupujú do sterilného tkaniva, cievneho systému alebo systémov, cez ktoré preteká krv; príkladmi sú chirurgické nástroje a cievne katétre.
Tieto pomôcky musia byť pred použitím riadne a bezpečne predčistené a sterilizované.
Polokritické zariadenia prichádzajú do kontaktu s neporušenými sliznicami alebo neporušenou pokožkou; príkladmi sú endoskopy s optickými vláknami, vaginálne sondy a asistované dýchanie zariadení.
Tieto predmety vyžadujú pred použitím riadne predčistenie a minimálne dezinfekciu na vysokej úrovni.
Nekritické zariadenia (ako sú manžety na meranie krvného tlaku, stetoskopy), ktoré prichádzajú do kontaktu s neporušenou pokožkou, majú nízke riziko šírenia infekcií, s výnimkou prenosu patogénov do rúk zdravotníckeho personálu.
Pravidelné čistenie a utieranie týchto zariadení neutrálnym čistiacim prostriedkom alebo 70 % roztokom vody a etanolu je zvyčajne postačujúce (opakovane použiteľné podstielky, hoci sa nepovažujú za kritické zariadenia, vyžadujú dôslednejšie čistenie, umývanie a dezinfekciu, najmä ak sú kontaminované napr. je podozrenie na enterokoky rezistentné na vankomycín alebo Clostridium difficile).
Väčšina povrchov prostredia v pacientskej izbe a čakárňach sa nepovažuje za kritickú a nevyžaduje rutinnú dezinfekciu.
Povrchy s vysokou frekvenciou kontaktu, najmä tie v bezprostrednej blízkosti pacienta, však vyžadujú pravidelnú dekontamináciu, aby sa zabránilo prenosu patogénov do rúk ošetrujúceho personálu.
Nedávne usmernenia neuvádzajú, či, kedy, ako a ako často by sa takéto povrchy mali dekontaminovať. 9,10.
Hoci klasifikačný systém Spaulding 7 zostáva platný, je potrebné ho prispôsobiť aktuálnym potrebám.
Prióny so svojou nezvyčajnou odolnosťou voči fyzikálnym a chemickým látkam 11 a objavením sa infekcií súvisiacich so starostlivosťou spôsobených spórami Clostridium difficile 10 alebo Enterobacteriaceae 12 rezistentnými na karbapenémiu vedú k opätovnému preskúmaniu repasovania zdravotníckych pomôcok.
Pomôcky kontaminované priónmi vyžadujú sterilizačné protokoly, ktoré sú ďaleko nad rámec bežne používaných protokolov 11.
Niektoré dezinfekčné prostriedky (napr. aldehydy), ktoré sa zvyčajne používajú na regeneráciu gastrointestinálnych endoskopov, potrebujú dlhší kontaktný čas na usmrtenie spór C. difficile.
Zariadenia citlivé na teplo, ako sú flexibilné endoskopy s optickými vláknami, sa čoraz častejšie používajú pri operáciách, pri ktorých sa úmyselne porušuje integrita sliznice, čím sa prekračuje hranica medzi „kritickými“ a „polokritickými“ zariadeniami.
PREPRACOVANIE ZDRAVOTNÍCKYCH POMÔCOK: DEZINFEKCIA
„Dezinfekcia“ znamená zníženie počtu patogénov na neživom povrchu alebo predmete použitím tepla, chemikálií alebo oboch.
Väčšina dezinfekčných postupov má malú aktivitu proti bakteriálnym spóram; akékoľvek zníženie množstva spór sa dosahuje najmä mechanickým pôsobením a umývaním.
ČÍSLO JEDNA V AMBULANCE VHODNÉ V TALIANSKU: NAVŠTÍVTE BOX ORION NA EMERGENCY EXPO
ČISTENIE, DEZINFEKCIA A STERILIZÁCIA: PASTERIZÁCIA A VAR
Polokritické zariadenia, ako sú zariadenia používané na respiračnú terapiu alebo anestéziologické zariadenia, možno pasterizovať zahrievaním vo vode.
Všetky ich časti musia zostať úplne ponorené aspoň 30 minút pri teplote 65-77°C.
Na miestach vo vyšších nadmorských výškach je potrebný dlhší čas na dosiahnutie bodu varu vody, pretože sa zvyšuje, keď sa človek vzďaľuje od hladiny mora. 13
Namáčanie tepelne odolných zariadení vo vriacej vode na približne 10 minút môže podstatne znížiť mikrobiálnu záťaž patogénmi, ale nikdy by sa nemalo považovať za „sterilizáciu“.
Pasterizácia a varenie sú preto nízkotechnologické metódy bez chemikálií (pokiaľ je voda čistá); Po ošetrení sa s predmetmi musí zaobchádzať opatrne, aby sa zabezpečila bezpečná preprava a skladovanie.
ČISTENIE, DEZINFEKCIA A STERILIZÁCIA: CHEMICKÁ DEZINFEKCIA
Medzi bežné chemické dezinfekčné prostriedky patria alkoholy, chlór a zlúčeniny chlóru, glutaraldehyd, orto-ftalaldehyd, peroxid vodíka, kyselina peroctová, fenoly a kvartérne amóniové zlúčeniny (CAQ).
Tieto chemikálie môžu byť použité samostatne alebo v kombinácii.
Musia sa používať v súlade s pokynmi výrobcu na etikete výrobku a len na povrchoch, s ktorými sú kompatibilné.
V ideálnom prípade by komerčné produkty mali prejsť štandardnými testami na podporu toho, čo je uvedené na etikete pred predajom a používaním v zdravotníckych zariadeniach.
Požiadavky na registráciu produktov a to, čo je uvedené na etikete, sa však v jednotlivých regiónoch značne líšia.
Chemické dezinfekčné prostriedky sa značne líšia, pokiaľ ide o škodlivé účinky, ktoré môžu spôsobiť ľuďom a životnému prostrediu; mali by sa používať opatrne a len vtedy, keď nie sú dostupné žiadne životaschopné alternatívy.
Dezinfekčné prostriedky sú rozdelené do troch kategórií podľa ich mikrobicídnej aktivity: Vysokoúrovňové dezinfekčné prostriedky
Vysokoúrovňové dezinfekčné prostriedky (DAL) sú aktívne proti baktériám vo vegetatívnej forme, vírusom (vrátane skrytých vírusov), plesniam a mykobaktériám. Pri dlhšom kontaktnom čase môžu pôsobiť aj proti bakteriálnym spóram.
DAL sa používajú na dezinfekciu zariadení citlivých na teplo a polokritických zariadení, ako sú flexibilné endoskopy s optickými vláknami.
Aldehydy (glutaraldehyd a ortoftalaldehyd) a oxidanty (napr. peroxid vodíka a kyselina peroctová) sú DAL.
Aldehydy sú nekorozívne a sú bezpečné pre použitie na väčšine zariadení.
Môžu však podporovať priľnavosť organických materiálov; preto je obzvlášť dôležité pred dezinfekciou odstrániť všetky prichytené mikroorganizmy.
Ak nie sú oxidačné činidlá správne formulované a používané, môžu byť korozívne.
Môžu však pôsobiť rýchlejšie, nefixovať sa a byť bezpečnejšie pre životné prostredie ako aldehydy.
V závislosti od teploty DAL zvyčajne vyžadujú 10 až 45 minút času kontaktu.
Po dezinfekcii zariadenia vyžadujú dôkladné umytie sterilnou alebo mikrofiltrovanou vodou, aby sa odstránili všetky zvyšky chemikálií; zariadenia sa potom musia pred uskladnením vysušiť prechodom roztoku na báze alkoholu alebo prefúknutím čistého filtrovaného vzduchu cez kanály zariadenia.
Dezinfekčné prostriedky strednej úrovne
Dezinfekčný prostriedok (napr. etanol) účinný proti baktériám vo vegetatívnej forme, mykobaktériám, hubám a väčšine vírusov.
Dokonca aj po dlhšej expozícii nemusí byť schopný zabiť spóry.
Nízkoúrovňové dezinfekčné prostriedky
Nízkoúrovňové dezinfekčné prostriedky (napr. kvartérne amóniové zlúčeniny) sú aktívne proti baktériám vo vegetatívnej forme (okrem mykobaktérií), niektorým hubám a len obaleným vírusom.
V mnohých prípadoch by namiesto takýchto dezinfekčných prostriedkov stačilo umývanie neantiseptickým mydlom a vodou.
STERILIZÁCIA
Sterilizácia je akýkoľvek proces, ktorý môže inaktivovať všetky mikroorganizmy nachádzajúce sa v predmete alebo na predmete; štandardné sterilizačné postupy môžu vyžadovať variácie aktivity na priónoch.11
Teplo je najspoľahlivejší spôsob sterilizácie; väčšina chirurgických nástrojov je odolná voči teplu.
Vlhké teplo, používané v autokláve ako para pod tlakom, zabíja mikroorganizmy denaturáciou ich bielkovín.
Suché teplo používané v rúre zabíja oxidáciou, a to oveľa pomalším procesom.
Suché teplo sa používa na sterilizáciu materiálov citlivých na vlhkosť (bezvodé prášky) alebo predmetov, ktoré para neprenikne (oleje a vosky).
Zariadenia citlivé na teplo vyžadujú sterilizáciu pri nízkej teplote; Na tento účel sa často používa etylénoxid (EO), plynná plazma peroxidu vodíka a para formaldehydu.14
Sterilizované pomôcky sa musia skladovať na čistom, bezprašnom a suchom mieste a musí byť zaručená neporušenosť obalu.
Balenia so sterilným materiálom musia byť pred použitím skontrolované na integritu bariéry a absenciu vlhkosti.
Ak dôjde k narušeniu obalu, pomôcky sa nesmú použiť, ale znova vyčistiť, zabaliť a sterilizovať.
Sterilizácia parou Para je najspoľahlivejší spôsob sterilizácie.
Je netoxický (keď sa vyrába z vody bez prchavých chemikálií), má širokospektrálnu mikrobicídnu aktivitu a dobrú penetračnú kapacitu a je lacný a ľahko sa ovláda.15,16
Sterilizácia vyžaduje priamy kontakt medzi predmetom, ktorý sa má sterilizovať, a parou pri požadovanej teplote a tlaku počas daného času.
Autoklávy sú špeciálne navrhnuté komory, kde para pod tlakom vytvára vysoké teploty.
Sú založené na rovnakom princípe ako tlakový hrniec.
Existujú dva hlavné typy parných sterilizátorov:
– V autoklávoch s gravitačným (smerným) odstraňovaním sa para zavádza do hornej časti komory, aby sa odstránila chladnejšia, hustejšia zmes vzduchu a pary zo spodnej časti komory. Výfukový ventil sa zatvorí, keď sa odstráni všetok vzduch, čím sa umožní zvýšenie tlaku a teploty. Takéto autoklávy sa používajú na sterilizáciu kvapalín a predmetov v uzavretých priestoroch, do ktorých je para schopná preniknúť. Sterilizačná fáza zvyčajne trvá asi 15 minút pri 121 °C pri 103.4 kilopascaloch (15 libier/štvorcový palec).
– Vo vysokovákuových autoklávoch sa najskôr vytvorí vákuum v sterilizačnej komore a potom sa zavedie para, čo umožňuje rýchlejší a efektívnejší vstup pary do celej náplne. Rýchlo rastúci tlak a teplota umožňujú procesné časy tri minúty pri 134 °C pri približne 206.8 kilopascalov (30 libier/štvorcový palec).
Nástroje, ktoré sa majú autoklávovať, musia byť zabalené v materiáloch, ktoré umožňujú prenikanie pary a udržiavajú ošetrovanú pomôcku počas skladovania sterilnú.
Je potrebné zabrániť preťaženiu autoklávu, aby sa umožnil voľný prístup pary v celom náklade.
Balenia musia byť označené tak, aby bolo možné identifikovať ich obsah a dátum sterilizácie, ako aj sériové číslo operátora a číslo cyklu, aby sa uľahčilo akékoľvek stiahnutie a uľahčila rotácia zásob.
Všetky parné sterilizátory sa musia analyzovať v čase inštalácie a potom pravidelne; o všetkých operáciách a bežnej údržbe sa musia viesť záznamy. Všetok personál musí byť dôkladne vyškolený v bezpečnom používaní autoklávu6.
KONTROLY V PROCESOCH ČISTENIA, DEZINFEKCIE A STERILIZÁCIE
K dispozícii sú biologické a chemické indikátory, ktoré sa musia používať na bežné monitorovanie autoklávov.
Biologické indikátory (IB) obsahujú spóry baktérie Geobacillus stearothermophilus.
Komerčne dostupné spóry alebo fľaše obsahujúce spóry sú strategicky umiestnené v náklade, ktorý sa má sterilizovať.
Po jednom cykle sú IB kultivované alebo hodnotené z hľadiska rastu a na úspešnú sterilizáciu nesmú vykazovať žiadny rast.
Chemické indikátory (CI) sa používajú na posúdenie, či bol počas procesu sterilizácie dosiahnutý požadovaný čas a teplota.
Príkladom CI je autoklávová páska, ktorá môže byť pripevnená na vonkajšiu stranu obalu; páska vykazuje zmenu farby, ak bol balík vystavený teplu.
Hoci integrované obvody nie sú vhodné na označenie, či bol produkt sterilizovaný, môžu pomôcť odhaliť poruchy zariadenia a identifikovať procedurálne chyby.
Pre proces s vysokým vákuom závisí prenikanie pary do náplne od dostatočného odvádzania vzduchu.
Dá sa to skontrolovať dvoma spôsobmi:
1) S „testom netesnosti“: možno udržať vákuum alebo bude unikať vzduch? (často okolo viečka).
2) So schopnosťou pary preniknúť do malého balenia uterákov použitých v teste „Bowie Dick“.
Ak sú výsledky týchto kontrol uspokojivé, alternatívnou kontrolou je „parametrické uvoľnenie“.
Tento systém je založený na kontrole, či sterilizačný cyklus spĺňa všetky špecifikácie pre teplotu, tlak a čas, pomocou kalibrovaných nástrojov navyše k IB alebo namiesto nich.
Keďže tento prístup je založený na merateľných údajoch a kalibrovaných nástrojoch, výsledky bývajú spoľahlivejšie a oveľa rýchlejšie ako pri použití IB.
OSTATNÉ STERILIZÁTORY
Para sa používa aj v ďalších dvoch typoch sterilizátorov.
Pri nízkoteplotnom paro-formaldehydovom procese sa para (50-80°C) s formaldehydom v plynnom stave používa na sterilizáciu zdravotníckych pomôcok citlivých na teplo (aj tých s obmedzeným lúmenom).
Ako obvykle sa zariadenia vyčistia a následne spracujú. Najprv sa vytvorí vákuum; para sa zavádza v postupných prúdoch, po ktorých nasleduje odparenie formaldehydu.
Na konci cyklu sa formaldehyd odstráni a autokláv sa úplne vyprázdni niekoľkými prúdmi pary a vysokým vákuom.
Na monitorovanie výkonu sterilizátora sa používajú chemické a biologické indikátory.
Tento systém nie je možné použiť s kvapalinami a potenciálna toxicita formaldehydu zostáva problémom.
V procese rýchlej alebo okamžitej sterilizácie (blesková sterilizácia) sa para používa na ošetrenie kritických zariadení, ako sú chirurgické zariadenia náhodne kontaminované počas operácie alebo keď nie sú k dispozícii žiadne iné spôsoby sterilizácie.
Nikdy by sa nemal používať pre implantovateľné zariadenia alebo na kompenzáciu nedostatku základných zariadení.
Pri rýchlej sterilizácii poréznych alebo neporéznych predmetov nie je možné použiť autokláv s gravitačným odvodom pary alebo vysokým vákuom bez zabalenia alebo s použitím jedného obalu.
Nie je možné čakať na načítanie použitých IB kvôli rýchlosti, s akou sa zariadenia repasujú.
Ak sa nepoužívajú správne nádoby, existuje vysoké riziko rekontaminácie ošetrovaných predmetov a tiež popálenín personálu počas prepravy na miesto použitia.
MIKROVLNNÁ
Vystavenie predmetov obsahujúcich vodu mikrovlnám vytvára teplo v dôsledku trenia generovaného rýchlou rotáciou molekúl vody.
Doteraz sa tento proces používal len na dezinfekciu mäkkých kontaktných šošoviek a kauterizáciu močových katétrov.
Malé objemy vody však môžu byť bezpečné na potravinárske účely vystavením mikrovlnám v sklenenej alebo plastovej nádobe.
Podobne sa dajú malé sklenené alebo plastové predmety ponoriť do vody a „dezinfikovať“ v mikrovlnnej rúre.
STERILIZÁCIA SUCHÝM TEPELOM
Teplovzdušné pece sa používajú na sterilizáciu suchým teplom.
Môžu dosahovať vysoké teploty a mali by byť vybavené ventilátorom pre rovnomerné rozloženie tepla.
Predhrievanie je v podstate pred spustením sterilizačného cyklu.
Teplovzdušné pece majú jednoduchší dizajn a bezpečnejšie sa používajú ako autoklávy a sú vhodné na sterilizáciu skla, kovových predmetov, práškov a bezvodých materiálov (oleje a mastnoty).
Sterilizácia trvá dve hodiny pri 160 °C alebo jednu hodinu pri 180 °C.
Guma, papier a látka by sa nemali ošetrovať, aby sa predišlo riziku požiaru.
ETYLÉNOXID
Etylénoxid (EO) sa používa na sterilizáciu predmetov, ktoré sú citlivé na teplo, tlak alebo vlhkosť.
EO je bezfarebný, horľavý, výbušný plyn, ktorý je toxický pre ľudí.
OE je k dispozícii ako plynná zmes s hydrochlórofluorokarbónmi (IFCC) alebo existuje zmes 8.5 % OE a 91.5 % oxidu uhličitého; ten druhý je lacnejší.
Koncentrácia EO, teplota, relatívna vlhkosť a expozícia sa musia počas procesu udržiavať na správnej úrovni, aby sa zabezpečila sterilizácia.
Koncentrácia plynu by mala byť medzi 450 a 1200 mg/l, teplota medzi 37° a 63°C, relatívna vlhkosť medzi 40% a 80% a expozícia medzi 1 a 6 hodinami.
Uvoľnenie parametrických hodnôt nie je možné, pretože koncentrácia plynu a relatívna vlhkosť sa nedajú ľahko merať; ZS musí byť súčasťou každého nákladu.
Odporúčaná IB je Bacillus atrophaeus; dávky by sa mali držať v karanténe, kým sa nedokončí inkubácia IB.
Hlavnými nevýhodami sterilizácie s OE sú dlhé doby cyklu a vysoké náklady.
Sterilizované predmety musia byť po procese dobre vetrané, aby sa odstránili všetky zvyšky OE pre bezpečnosť pacienta.
PEROXID VODÍKA PLAZMOVÝ PLYN
Plazmový plyn sa generuje v uzavretej komore vo vysokom vákuu pomocou rádiových frekvencií alebo mikrovlnnej energie na excitáciu molekúl plynného peroxidu vodíka a produkciu nabitých častíc, z ktorých mnohé sú vysoko reaktívne voľné radikály.
Plazmový plyn sa môže použiť na sterilizáciu predmetov citlivých na teplo a vlhkosť, ako sú niektoré plasty, elektrické/elektronické zariadenia a kovové zliatiny citlivé na koróziu.
Ako IB sa používajú spóry G. stearothermophilus.
Ide o bezpečný proces a keďže nie je potrebné žiadne prevzdušňovanie, sterilizované predmety sú k dispozícii na okamžité použitie alebo pripravené na uskladnenie.
Nie je však vhodný pre zariadenia so slepými kanálikmi, prášky alebo kvapaliny.
Medzi ďalšie nevýhody patrí vysoká cena a potreba špeciálneho baliaceho materiálu, ako je papier alebo plátno, ktoré nemožno použiť.
Okrem toho akýkoľvek prítomný kvapalný alebo organický zvyšok interferuje s procesom.
FUMIGÁCIA
Nedávno sa zvýšil záujem o používanie fumigantov v životnom prostredí na boj so zdravotnými patogénmi, ako sú S. aureus a C. difficile rezistentné na meticilín.
K dispozícii je množstvo zariadení, ktoré sa líšia cenou, použitým procesom a typom testovania v teréne, ktoré podstupujú.
Bežným postupom je odparovanie roztoku peroxidu vodíka v utesnenej miestnosti, ako je napríklad izba pre pacienta, na dekontamináciu povrchov.
Po úprave nie je potrebné žiadne prevzdušňovanie, pretože peroxid vodíka sa ľahko rozkladá na kyslík a vodu.
Prúžky spór (IB) sú strategicky rozmiestnené po celej miestnosti a vyzdvihnuté neskôr, aby sa monitorovala účinnosť procesu.
Medzi nevýhody patrí nekompatibilita s celulózovými materiálmi a potenciálna korózia elektronických zariadení.
Oxid chloričitý vytvorený na mieste sa môže uvoľniť ako plyn na dekontamináciu miestnosti.
Miestnosti musia byť nielen utesnené, ale aj zatemnené, aby slnečné žiarenie nezrýchľovalo degradáciu plynu.
Podobne ako peroxid vodíka, aj oxid chloričitý sa prirodzene rozkladá na neškodné vedľajšie produkty.
Ozón môže dekontaminovať povrchy v uzavretých priestoroch; je vysoko nestabilný a potenciálne škodlivý pre rôzne materiály, ktoré sa bežne nachádzajú v zdravotníckych zariadeniach.
Komerčne dostupný je však sterilizátor zdravotníckych pomôcok na báze ozónu.
Plyn je generovaný z kyslíka a na konci cyklu ho katalýzou premieňa na kyslík a vodu.
Pre tento nástroj sa požaduje široká materiálová kompatibilita a schopnosť manipulovať s tenkými kanálmi.
ULTRAFIALOVÉ ŽIARENIE
Nedávne pokroky v technológii ultrafialového (UV) svetla robia mikrobicídny potenciál UV žiarenia krátkeho dosahu užitočným na rôzne použitia.
UV lampy sú široko používané na dezinfekciu vody a odpadových vôd.
Zariadenia na báze UV žiarenia sa predávajú na dezinfekciu vzduchu v nemocniciach a na klinikách, aby sa znížilo šírenie vzduchom prenášaných patogénov.
Tieto zariadenia sa tiež predávajú na dezinfekciu povrchov nemocničného prostredia.
UV žiarenie nepridáva do upravovanej vody a vzduchu žiadne chemikálie, s výnimkou vytvárania nízkej hladiny ozónu.
Nedokáže však preniknúť cez nečistoty a predmety vyžadujú priame vystavenie žiareniu.
Takéto žiarovky vyžadujú bežné čistenie a pravidelnú výmenu; môžu vyžarovať viditeľné svetlo aj po znížení UV žiarenia.
Referencie:
1. Asociácia pre rozvoj lekárskej prístrojovej techniky. Chemická sterilizácia a vysokoúrovňová dezinfekcia v zdravotníckych zariadeniach. ANSI/ AAMI ST58:2013.
2. Združenie pre rozvoj lekárskej prístrojovej techniky. Komplexný sprievodca parnou sterilizáciou a zaistením sterility v zdravotníckych zariadeniach. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.
3. Smernice pre kontrolu environmentálnych infekcií v zdravotníckych zariadeniach; Odporúčania CDC a Poradného výboru pre prax kontroly infekcií (HICPAC). MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf
4. Agentúra pre reguláciu liekov a zdravotníckych produktov, Ministerstvo zdravotníctva Spojeného kráľovstva: Dekontaminácia a kontrola infekcií; Usmernenie k dekontaminácii a kontrole infekcií vrátane chirurgických nástrojov, stomatologického vybavenia, endoskopov a stolných parných sterilizátorov, december 2014. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438
5. Ministerstvo zdravotníctva a dlhodobej starostlivosti Ontária. Provinčný poradný výbor pre infekčné choroby (PIDAC). Najlepšie postupy pre čistenie, dezinfekciu a sterilizáciu vo všetkých nastaveniach zdravotnej starostlivosti, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.
6. Rutala WA, Weber DJ. Smernica pre dezinfekciu a sterilizáciu v zdravotníckych zariadeniach, 2008. Centers for Disease Control and Prevention, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Desinfection_Nov_2008.pdf
7. Spaulding EH. Chemická dezinfekcia zdravotníckych a chirurgických materiálov. Dezinfekcia, sterilizácia a konzervácia, 3. vydanie, Block S (vyd.), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.
8. Medzinárodná norma ISO 15883-3; 2010, Umývačky-dezinfektory. Špecifikuje konkrétne požiadavky na umývacie a dezinfekčné zariadenia (WD), ktoré sú určené na použitie na vyprázdňovanie, preplachovanie, čistenie a tepelnú dezinfekciu nádob používaných na uchovávanie ľudského odpadu na likvidáciu v jednom prevádzkovom cykle. http:// www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078
9. Sattar SA, Maillard JY. Rozhodujúca úloha utierania pri dekontaminácii povrchov prostredia s vysokým dotykom: Prehľad súčasného stavu a smerovania do budúcnosti. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.
10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB a kol. Úloha nemocničných povrchov pri prenose nových patogénov spojených so zdravotnou starostlivosťou: norovírus, Clostridium difficile a druhy Acinetobacter. Am J Infect Control 2010; 38 (5 dodatok 1): S25-33.
11. Rutala WA, Weber DJ. Smernica pre dezinfekciu a sterilizáciu lekárskych nástrojov kontaminovaných priónmi. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.
12. Muscarella LF. Riziko prenosu Enterobacteriaceae rezistentných na karbapeném a súvisiacich „superbaktérií“ počas gastrointestinálnej endoskopie. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.
13. Snyder, OP. Kalibrácia teplomerov vo vriacej vode: Tabuľky bodu varu / atmosférického tlaku / nadmorskej výšky. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Ultimo prístup k 17. augustu 2015]
14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S, a kol. Porovnávacia štúdia etylénoxidového plynu, plynnej plazmy peroxidu vodíka a nízkoteplotnej parnej sterilizácie formaldehydom. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.
15. Seavey R. Vysokoúrovňová dezinfekcia, sterilizácia a antisepsa: aktuálne problémy pri regenerácii lekárskych a chirurgických nástrojov. Am J Infect Control 2013;41(5 Suppl):S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.
16. Rutala WA, Weber DJ. Nový vývoj v oblasti opätovného spracovania polokritických položiek. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl):S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.
17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA, et al. Prevencia a kontrola multirezistentných gramnegatívnych baktérií: odporúčania spoločnej pracovnej skupiny. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.
18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ a kol. Smernice ESCMID na riadenie opatrení na kontrolu infekcií na zníženie prenosu gramnegatívnych baktérií rezistentných voči viacerým liekom u hospitalizovaných pacientov. Clin Microbiol Infect 2014; Vol 20 (Suppl s1), s. 1–55.
Tiež:
1. Fraise AP, Maillard YJ a Sattar SA. Zásady a prax dezinfekcie, konzervácie a sterilizácie. 2013, 5. vydanie, Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, Anglicko; ISBN-13: 978- 1444333251.
2. McDonnell G. Antisepsa, dezinfekcia a sterilizácia: Typy, pôsobenie a odolnosť; American Society for Microbiology, Washington, DC, 2007. Dostupné elektronicky prostredníctvom kníh Google http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+disinfect ion,+and+sterilization&hl=sk&ei=Z2wvTeCBAYsyCi8gbl =book_result&ct=result&res num=8&ved=7CDEQ1AEwAA#v=onepage&q&f=false
3. McDonnell G. & Sheard D. Praktický sprievodca dekontamináciou v zdravotníctve. Wiley-Blackwell, Chichester, 2012.
4. Quinn, MM a kol. Čistenie a dezinfekcia environmentálnych povrchov v zdravotníctve: Smerom k integrovanému rámcu prevencie infekcií a chorôb z povolania? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.
5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Charakterizácia inaktivácie spór Bacillus subtilis v procesoch sterilizácie plynovou plazmou pri nízkom tlaku a pri nízkej teplote. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.
6. Sattar SA. Sľuby a úskalia nedávneho pokroku v chemických prostriedkoch prevencie šírenia nozokomiálnych infekcií povrchmi životného prostredia. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.
7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Bakteriálna kontaminácia stetoskopov používaných zdravotníckymi pracovníkmi: dôsledky pre verejné zdravie. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.
8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH, a kol. Opatrenia na kontrolu infekcie na obmedzenie šírenia Clostridium difficile. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (Suppl 5): 2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs na duodenoskopoch: Výzva čistenia a dezinfekcie opakovane použiteľných zariadení. J Clin Microbiol 2015: 53: 3118-3125.
Prečítajte si tiež:
FG MICRO H2O2: Skupina Focaccia uvádza na trh nový systém na dezinfekciu sanitiek
Čistenie, dezinfekcia a sterilizácia zdravotníckych priestorov a prostredia
Ambulančná dezinfekcia pomocou kompaktného atmosférického plazmového zariadenia: Štúdia z Nemecka
Ako správne dekontaminovať a vyčistiť sanitku?
Vibrácie nosidiel ambulancie: Štúdia o tlmiacich systémoch
Upratovanie po smrti, bioremediácia a sterilizácia v ambulanciách